Ex) Article Title, Author, Keywords
Online ISSN 2288-5978
Ex) Article Title, Author, Keywords
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition 2024; 53(7): 743-754
Published online July 31, 2024 https://doi.org/10.3746/jkfn.2024.53.7.743
Copyright © The Korean Society of Food Science and Nutrition.
Department of Food and Nutrition, Chungnam National University
Correspondence to:Hong-Sun Yook, Department of Food and Nutrition, Chungnam National University, 99, Daehak-ro, Yuseong-gu, Daejeon 34134, Korea, E-mail: yhsuny@cnu.ac.kr
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
This study examined the fermented rosemary obtained using various microorganisms (Bacillus subtilis, BS; Saccharomyces cerevisiae, SC; Lacticaseibacillus casei, LC; Levilactobacillus brevis, LB; Lactiplantibacillus plantarum, LP). The total polyphenol content, total flavonoid content, DPPH radical scavenging, ABTS radical scavenging, and FRAP value of Rosmarinus officinalis L. fermented products was the highest in the LC fermented products (P<0.05). The antibacterial activities of all R. officinalis L. fermented products were better than the non-fermented group at a concentration of 5 mg/disc, 10 mg/disc (P<0.05) against Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa. The nitrite scavenging ability of all R. officinalis L. fermented products was better than the non-fermented group. The tyrosinase and elastase inhibition activities of R. officinalis L. fermented products were the highest in the LC fermented products. Therefore, fermented rosemary products are expected to be useful as natural ingredients for functional food.
Keywords: Rosmarinus officinalis L., fermentation, antioxidant, antibacterial, tyrosinase and elastase inhibition activity
허브란 ‘푸른 풀’이라는 뜻을 가진 라틴어의 헤르바(herba)에서 유래된 어원이며 줄기와 잎, 뿌리, 열매 등 다양한 부위가 유용하게 활용될 수 있는 식물의 총칭으로 불리고 있다(Ryoo와 Cha, 1998). 허브는 종류에 따라 특유의 맛과 향을 가지고 있어 주로 향신료로 이용되어 왔으나 허브 내 함유된 여러 기능 성분의 유용성이 알려지면서 이를 활용한 화장품, 건강 보조 식품, 항산화제 등으로써 사용량이 증가하고 있다(Choi 등, 2010). 식품첨가물로 사용되는 허브의 경우 식품의 기호성을 증진시킬 뿐만 아니라 미생물 작용에 의해 발생하는 식품의 부패 및 변질을 억제하는 데 도움을 줄 수 있는데, 근래에는 소비자들이 건강 지향적인 식품 섭취를 선호함에 따라 인공적으로 제조된 합성 보존료가 아닌 천연 성분을 이용한 보존료의 사용을 지향하게 되었고 식품의 안전성과 신선함을 동시에 만족시킬 수 있는 허브가 합성 보존료의 적합한 대체제로 각광받고 있다(Choi와 Rhim, 2010; Yoo 등, 2005).
로즈마리(
로즈마리 발효에 사용된 균주는
본 실험에 사용된 로즈마리(터키산)는 건조된 원물 형태를 2023년 8월 진성 BNF에서 구입하였고 이를 분말화한 뒤 -24°C에서 냉동보관 하면서 실험에 사용하였다. 로즈마리 발효물의 제조 과정은 250 mL의 증류수에 5 g의 glucose(Sigma-Aldrich Co.)와 1.25 g의 peptone(Life Technologies Corp.)을 넣고 교반한 뒤 121°C에서 15분 동안 가압 고온 멸균하여 실온에서 서서히 식힌 다음 로즈마리 분말 12.5 g과 미리 활성화한 5종의 발효 균주를 각각 2.5 mL 주입하였다.
로즈마리 발효물의 동결건조 수율은 제조한 발효 및 무발효 로즈마리 추출물을 동결건조하여 건조중량을 구한 후 추출물 조제 시 사용된 원료 중량에 대한 백분율(%)로 나타내었다.
균주 성장에 따른 발효액의 pH 변화는 24시간 배양 후 멸균된 발효액을 여과한 다음 pH meter(K2000-pH, iSTEK Inc.)를 이용하여 측정하였다. 혼탁도 측정은 24시간 배양 후 멸균 및 여과된 발효액을 600 nm에서 흡광도를 측정하여 미생물의 발효 정도를 확인하였다. 생균수 측정은 24시간 배양한 로즈마리 발효액을 멸균수에 희석하여 충분히 혼합한 후 BS, LB, LC, LP는 plate count agar(Difco Laboratories), SC는 potato dextrose agar(Difco Laboratories)에 분주한 다음 각각 37°C, 30°C에서 24~48시간 배양하여 생균수를 측정하였다.
총당 함량 측정은 phenol-sulfuric acid 방법(Cho 등, 2015)을 사용하여 측정하였다. 시료에 5% phenol(Junsei Chemical Co., Ltd.)과 sulfuric acid(H2SO4, Junsei Chemical Co., Ltd.)를 첨가하여 혼합하고 20분간 방치한 후 490 nm에서 흡광도를 측정하였다.
환원당 함량 측정은 DNS 방법(Meller, 1959)을 사용하여 측정하였다. 시료에 DNS 용액을 넣고 혼합한 후 10분간 끓는 물에서 반응시킨 뒤 5분간 냉각하여 550 nm에서 흡광도를 측정하였다. 총당과 환원당의 함량은 glucose(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 표준물질로 하여 검량선을 작성한 후 시료 100 mg에 대한 mg glucose equivalents(GE)로 나타내었다.
총 폴리페놀 함량 측정은 Folin과 Denis(1912)법을 응용하여 측정하였다. 시료에 Folin-Ciocalteu’s phenol reagent (Sigma-Aldrich Co.)와 증류수를 1:2(v/v)의 비율로 섞은 혼합액을 첨가하여 3분간 반응시킨 후 10% Na2CO3(w/v, Duksan Chemical Co., Ltd.) 용액을 섞어 1시간 동안 암실에서 반응시키고 765 nm에서 흡광도를 측정하였다. 결괏값은 gallic acid(Sigma-Aldrich Co.)를 사용하여 검량선을 작성한 후 시료 1 g에 대한 mg gallic acid equivalents(GAE)로 나타내었다.
총 플라보노이드 함량 측정은 Zhishen 등(1999)의 방법을 사용하여 측정하였다. 시료에 증류수와 5% NaNO2(w/v, Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 넣어 섞은 후 5분간 방치하였다. 이후 10% AlCl3・6H2O(w/v, Junsei Chemical Co., Ltd.)를 넣고 6분간 방치한 다음 1 M NaOH(Daejung Chemical & Metals Co., Ltd.)를 가하여 11분간 반응시킨 후 510 nm에서 흡광도를 측정하였다. 결괏값은 catechin hydrate(Sigma-Aldrich Co.)를 사용하여 검량선을 작성한 후 시료 1 g에 대한 mg catechin equivalents(CE)로 나타내었다.
2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl(DPPH) 라디칼 소거 활성은 Blois(1958)의 방법을 참고하여 측정하였다. 시료에 0.2 mM DPPH(Sigma-Aldrich Co.) solution을 첨가하여 혼합한 다음 암실에서 30분간 반응시킨 후 517 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조군은 시료 대신 시료 희석용매인 증류수를 사용하여 위와 같은 방법으로 흡광도를 측정하여 비교하였고, 결괏값은 대조군에 대한 시료 첨가군의 감소한 흡광도를 백분율(%)로 구한 후 IC50값으로 나타내었다. 양성대조군으로 기존의 항산화제인 ascorbic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 사용하여 비교하였다.
2,2′-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonate)(ABTS) 라디칼 소거 활성은 Fellegrini 등(1999)의 방법을 참고하여 측정하였다. ABTS solution은 140 mM K2S2O8(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)에 증류수를 가한 후 ABTS diammonium salt tablet(Sigma-Aldrich Co.) 2알을 넣어 암실에서 12~16시간 동안 방치하고 이를 95% 에탄올(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)과 혼합하여 734 nm에서 측정한 흡광도 값이 0.70±0.02가 되도록 조절하여 사용하였다. 시료에 ABTS solution 1 mL를 가한 후 2분 30초간 암실에서 반응시킨 다음 734 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조군은 시료 희석용매인 증류수를 사용하여 위와 같은 방법으로 흡광도를 측정하여 비교하였고, 결괏값은 대조군에 대한 시료 첨가군의 감소한 흡광도를 백분율(%)로 구한 후 IC50값으로 나타내었다. 양성대조군은 ascorbic acid를 사용하여 비교하였다.
Ferric reducing antioxidant power(FRAP) 측정 방법은 Benzie와 Strain(1996) 방법을 참고하여 측정하였다. FRAP solution은 300 mM acetate buffer(pH 3.6)와 40 mM HCl(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)에 용해한 10 mM 2,4,6-tris(2-pyridyl)-s-triazine(TPTZ, Sigma-Aldrich Co.), 20 mM FeCl3・6H2O(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 각각 10:1:1(v/v/v)의 비율로 섞은 후 37°C에서 10분간 반응시켜 제조한 후 사용하였다. 시료에 증류수와 FRAP solution을 넣고 37°C에서 10분간 반응시킨 후 593 nm에서 흡광도를 측정하였다. FRAP value는 FeSO4・7H2O(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 표준물질로 이용하여 작성한 검량선에 대입하여 환산하였으며, 시료 1 g에 들어있는 FeSO4・7H2O의 mM 함량으로 나타내었다.
항균 활성은 각 유해 균주를 대상으로 disc diffusion assay(Bauer 등, 1966)를 통해 측정하였다. 항균 활성 측정에 사용된 균주는 Gram positive bacteria인
Table 1 . List of strains used for antimicrobial experiments
Strains | Media1) | Temp. (°C) | |
---|---|---|---|
Gram positive bacteria | NA/NB | 30 | |
NA/NB | 30 | ||
NA/NB | 30 | ||
Gram negative bacteria | NA/NB | 30 | |
NA/NB | 30 | ||
NA/NB | 37 | ||
NA/NB | 37 |
1)NA: nutrient agar, NB: nutrient broth.
아질산염 소거 활성 측정 방법은 Gray와 Dugan(1975)의 방법을 참고하여 측정하였다. 시료에 1 mM NaNO2(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)와 0.2 M citrate buffer(pH 3.0)를 가하고 37°C에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응시킨 혼합물에 2% acetic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.), Griess reagent(30% acetic acid를 이용하여 제조한 1% sulfanilic acid, 1% 1-naphthylamine을 사용 직전 1:1 비율로 섞어 제조)를 가하여 15분간 반응시킨 다음 520 nm에서 흡광도를 측정하였다. 양성대조군은 ascorbic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 사용하여 비교하였으며 결괏값은 시료 첨가군과 시료 무첨가군을 백분율(%)로 산출하여 나타내었다.
Tyrosinase 저해 활성은 Flurkey(1991)의 방법을 이용하여 측정하였다. 0.1 M potassium phosphate buffer(pH 6.8), 시료, 10 mM L-DOPA(dihydroxy-phenylalanine, Sigma-Aldrich Co.)를 넣고 혼합한 뒤 0.1 M potassium phosphate buffer(pH 6.8)에 용해한 효소액(mushroom tyrosinase, 100 unit/mL, Sigma-Aldrich Co.)을 첨가하여 37°C에서 15분간 반응시키고 475 nm에서 흡광도를 측정하였다. Kojic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 양성대조군으로 사용하여 비교하였으며 tyrosinase 저해 활성은 시료 첨가군과 시료 무첨가군을 백분율(%)로 산출하여 나타내었다.
Elastase 저해 활성은 Kraunsoe 등(1996)의 방법을 참고하여 측정하였다. 0.2 M Tris-HCl buffer(pH 8.0), 시료, N-succinyl-(Ala)3-
모든 실험은 3회 이상 반복 실시하였고 자료의 통계처리는 SPSS 26.0(Statistical Package for the Social Sciences, SPSS Inc.)을 사용하여 평균과 표준편차로 나타내었다. 수율 결과를 제외한 모든 데이터는 일원배치 분산분석(one way ANOVA)을 통해 95% 유의수준에서 통계적 유의성(
5종의 유용 미생물로 발효시킨 로즈마리의 동결건조 수율은 Table 2에 나타내었다. 로즈마리 발효물의 수율은 BS 발효군이 53.64%로 가장 높게 나타났고 LP(52.81%), SC(52.41%), LB(51.73%), LC(34.17%), control(15.61%) 순으로 높은 수율을 보였으며 무발효 대조군인 control에 비해 로즈마리 발효군의 수율이 증가하는 경향을 보였다. 이는 Lee와 Yook(2023)의 눈개승마를 여러 유용 균주를 이용하여 발효한 연구에서 발효군의 수율이 가장 높게 나타났다는 보고와 일치하였고 눈개승마 발효군의 수율이 증가한 이유는 발효 과정 중 균주로부터 유도되는 여러 효소에 의해 대사산물 생성량이 증가한 것과 관련이 있을 것으로 추측된다고 보고하였다. 따라서 본 연구에서 로즈마리 발효군의 수율이 증가한 이유 또한 각 미생물이 로즈마리 내 유기화합물의 분해를 유도하여 여러 분해 산물이 생성된 것에 영향을 받은 것으로 판단된다.
Table 2 . The yield of fermented
Samples1) | Yield (%) |
---|---|
Control | 15.61 |
BS | 53.64 |
SC | 52.41 |
LC | 34.17 |
LB | 51.73 |
LP | 52.81 |
1)Control, non-fermented
로즈마리 발효 정도를 확인하기 위해 미생물별 24시간 발효시킨 로즈마리 발효액의 배양 특성 결과를 Table 3에 나타냈다. Hur 등(2014)은 발효 중 미생물에 의한 pH 변화가 식품 성분의 세포벽 분해 정도에 영향을 미치고 페놀성 화합물의 함량 및 구조의 변화를 유도하여 항산화 활성에 영향을 미칠 수 있다고 보고하였다. 본 연구에서 control의 pH는 5.66±0.01로 나타났고 발효군의 pH는 4.44~4.83 범위를 보여 로즈마리 발효 시 control에 비해 pH가 감소하는 것으로 나타났다(
Table 3 . pH value, turbidity, and viable cell count in the broth of fermented
Samples1) | pH | Turbidity2) | Viable cell count (log CFU/mL) |
---|---|---|---|
Control | 5.66±0.01a3)4) | 0.32±0.00e | - |
BS | 4.81±0.01c | 0.38±0.01d | 7.24±0.01e |
SC | 4.83±0.01b | 0.42±0.00c | 7.97±0.05b |
LC | 4.44±0.01f | 0.45±0.00a | 9.23±0.02a |
LB | 4.74±0.00d | 0.38±0.00d | 7.68±0.06d |
LP | 4.67±0.00e | 0.43±0.00b | 7.77±0.03c |
1)Samples are the same as in Table 2.
2)Turbidity measurement based on OD600 in the broth of
3)Mean±SD (n=3).
4)Different letters in a column differ significantly (
로즈마리 발효물의 혼탁도 분석 결과 control은 0.32±0.00으로 나타났고 발효군의 혼탁도는 0.38~0.45의 범위를 보여 로즈마리 발효 시 혼탁도가 유의적으로 증가했음을 확인하였다(
로즈마리 발효물이 미생물 생장에 영향을 미치는 정도를 판단하기 위해 로즈마리 발효액의 생균수를 측정했으며, 각 발효물의 생균수는 7.24~9.23 log CFU/mL로 나타났다. LC 발효군이 9.23±0.02 log CFU/mL로 가장 높았으며 이어서 SC(7.97±0.05 log CFU/mL), LP(7.77±0.03 log CFU/mL), LB (7.68±0.06 log CFU/mL), BS(7.24±0.01 log CFU/mL) 순으로 높은 생균수를 보였다. Kurmann과 Rasic(1991)은 체내에서 유용한 성분을 생성하기 위한 프로바이오틱스의 최소 미생물 개체 수는 105 CFU/mL 이상이어야 한다고 보고했으며, 본 연구에서는 모든 발효군에서 7 log CFU/mL 이상의 생균수를 보여 로즈마리 발효 과정 중 미생물 생장이 활발하게 진행되었음을 확인하였고 유용 균주들의 생장에 의해 다양한 생리활성 물질이 생성될 가능성이 있을 것으로 사료된다.
미생물별 로즈마리 발효물의 총당 및 환원당 측정 결과는 Table 4에 나타냈다. Control의 총당 함량은 29.27±0.19 GE mg/100 mg으로 나타났고 발효군은 53.88~90.21 GE mg/100 mg 범위를 보여 로즈마리를 발효했을 때 총당 함량이 전반적으로 증가하는 경향을 보였다(
Table 4 . Total sugars and reducing sugars of fermented
Samples1) | Total sugars (GE mg/100 mg2)) | Reducing sugars (GE mg/100 mg) |
---|---|---|
Control | 29.27±0.19e3)4) | 31.74±0.17e |
BS | 84.01±0.94c | 67.94±0.35c |
SC | 90.21±0.28a | 70.70±0.29a |
LC | 53.88±0.22d | 43.56±0.42d |
LB | 87.60±0.52b | 68.27±0.10c |
LP | 87.54±0.45b | 68.88±0.17b |
1)Samples are the same as in Table 2.
2)Glucose equivalent mg/100 mg.
3)Mean±SD (n=3).
4)Different superscripts (a-e) in a column indicate significant differences at
로즈마리 발효물의 균주별 폴리페놀 함량 측정 결과는 Table 5와 같으며, LC 발효군이 205.85±1.65 GAE mg/g으로 모든 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 값을 나타냈다(
Table 5 . Total phenolic contents and total flavonoid contents of fermented
Samples1) | Total phenolic contents (GAE mg/g2)) | Total flavonoid contents (CE mg/g3)) |
---|---|---|
Control | 149.72±1.65d4)5) | 55.91±1.14de |
BS | 159.63±1.65b | 71.64±1.14b |
SC | 152.47±0.95c | 58.53±1.14d |
LC | 205.85±1.65a | 120.15±1.97a |
LB | 149.17±0.95d | 54.60±1.14e |
LP | 154.12±0.95c | 64.43±2.27c |
1)Samples are the same as in Table 2.
2)Gallic acid equivalent mg/g.
3)Catechin equivalent mg/g.
4)Mean±SD (n=3).
5)Different superscripts (a-d) in a column indicate significant differences at
로즈마리 발효물의 균주별 총 플라보노이드 함량 측정 결과는 Table 5에 나타냈으며, LC 발효군이 120.15±1.97 CE mg/g으로 모든 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 함량을 보였다(
로즈마리 발효물의 DPPH 라디칼 소거 활성 측정 결과는 50% 라디칼을 소거하는 시료 농도인 IC50값으로 Table 6에 나타냈다. 실험에 사용된 positive control인 ascorbic acid의 IC50값은 0.017±0.000 mg/mL로 나타났으며, LC 발효군의 IC50값은 0.067±0.001 mg/mL로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 낮은 값을 보였다(
Table 6 . DPPH and ABTS radical scavenging activity and ferric reducing antioxidant power (FRAP) value of fermented
Samples1) | DPPH radical scavenging activity IC50 (mg/mL)2) | ABTS radical scavenging activity IC50 (mg/mL) | FRAP value (mM/g) |
---|---|---|---|
Ascorbic acid | 0.017±0.000e3)4) | 0.12±0.00e | - |
Control | 0.092±0.001b | 0.69±0.00b | 1,398.28±46.22d |
BS | 0.091±0.001b | 0.68±0.00bc | 1,508.16±14.10b |
SC | 0.092±0.001b | 0.76±0.00a | 1,418.63±12.21cd |
LC | 0.067±0.001d | 0.50±0.01d | 2,330.20±61.45a |
LB | 0.095±0.001a | 0.76±0.00a | 1,386.07±14.10d |
LP | 0.089±0.000c | 0.68±0.01c | 1,463.40±7.05bc |
1)Samples are the same as in Table 2.
2)Inhibitory activity was expressed as the mean of 50% inhibitory concentration of triplicate determines, obtained by interpolation of concentration inhibition curve.
3)Mean±SD (n=3).
4)Different letters in a column differ significantly (
로즈마리 발효물의 ABTS 라디칼 소거 활성 측정 결과는 50% 라디칼을 소거하는 시료 농도인 IC50값으로 Table 6에 나타냈다. 실험에 사용된 positive control인 ascorbic acid의 IC50값은 0.12±0.00 mg/mL로 나타났으며, LC 발효군의 IC50값은 0.50±0.01 mg/mL로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 낮은 값을 보였다(
로즈마리 발효물의 균주별 FRAP 측정 결과는 Table 6에 나타냈다. LC 발효군의 FRAP 값은 2,330.20±61.45 mM/g으로 유의적으로 가장 높은 값을 보였고(
균주별 로즈마리 발효물의 항균 활성을 측정한 결과는 Table 7과 같으며 모든 로즈마리 발효 및 무발효군에서
Table 7 . Antibacterial activities of fermented
Microorganism | Size of clear zone (mm) | |
---|---|---|
Samples1) | Fraction conc. (mg/disc)2) | |
10.0 | ||
Control | -3) | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | 1.01±0.14*4) | |
SC | 1.09±0.08* | |
LC | 1.43±0.13* | |
LB | 1.13±0.13* | |
LP | 1.39±0.17* | |
Control | 1.11±0.08 | |
BS | 2.13±0.10* | |
SC | 1.65±0.13* | |
LC | 1.08±0.07 | |
LB | 1.14±0.09 | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | 2.07±0.10* | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | 6.98±0.38* | |
SC | 5.07±0.83* | |
LC | 9.04±0.55* | |
LB | 5.60±0.47* | |
LP | 6.56±0.21* |
1)Samples are the same as in Table 2.
2)Antibacterial activities was not measured at 5.0 mg/disc concentrations except for
3)Not detected: 0.00±0.00 mm.
4)Mean±SD (n=3).
5)Antibacterial activities at 5.0 mg/disc concentration: control, not detected; BS, 2.99±0.06*; SC, 2.13±0.07*; LC, 5.48±0.40*; LB, 2.50±0.11*; LP, 2.78±0.11*.
*
본 연구에서 로즈마리 발효 및 무발효군의 아질산염 소거 활성을 측정한 결과는 Table 8과 같으며, 발효 및 무발효군과 ascorbic acid의 농도는 5 mg/mL로 제조하여 실험에 사용하였다. Positive control인 ascorbic acid의 아질산염 소거 활성은 97.27±0.22%로 나타났으며, LC 발효군이 82.18±0.16%로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 소거 활성을 보였다(
Table 8 . Nitrite scavenging ability, tyrosinase and elastase inhibition activity of fermented
Samples1) | Nitrite scavenging ability (%) | Tyrosinase inhibition activity (%) | Elastase inhibition activity (%) |
---|---|---|---|
Positive control2) | 97.27±0.22a3)4) | 99.82±0.15a | 81.14±1.23a |
Control | 61.79±1.08e | 28.90±1.32e | 43.80±0.60d |
BS | 74.31±0.59c | 41.32±0.95c | 47.39±0.66c |
SC | 70.99±0.75d | 27.84±0.70e | 38.51±0.46f |
LC | 82.18±0.16b | 84.23±2.71b | 53.44±0.49b |
LB | 70.61±1.03d | 14.63±1.73f | 39.69±0.40ef |
LP | 70.14±1.08d | 34.80±1.25d | 40.78±0.67e |
1)Samples are the same as in Table 2.
2)Nitrite scavenging ability: ascorbic acid, tyrosinase inhibition activity: kojic acid, elastase inhibition activity: ascorbic acid.
3)Mean±SD (n=3).
4)Different letters in a column differ significantly (
본 연구에서 로즈마리 발효 및 무발효군의 tyrosinase 저해 활성을 측정한 결과는 Table 8과 같으며, 발효 및 무발효군과 kojic acid의 농도는 1 mg/mL로 제조하여 실험에 사용하였다. Positive control인 kojic acid의 tyrosinase 저해 활성은 99.82±0.15%로 나타났으며, LC 발효군이 84.23±2.71%로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 저해 활성을 보였다(
본 연구에서 로즈마리 발효 및 무발효군의 elastase 저해 활성을 측정한 결과는 Table 8과 같으며, 발효 및 무발효군과 ascorbic acid의 농도는 1 mg/mL로 제조하여 실험에 사용하였다. Positive control인 ascorbic acid의 elastase 저해 활성은 81.14±1.23%로 나타났으며 LC 발효군이 53.44±0.49%로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 저해 활성을 보였다(
본 연구는 다양한 생리적 기능성이 입증된 로즈마리에 5종의 유용 균주를 접종하여 발효시킨 뒤 각 발효물의 배양 특성과 항산화 활성을 기존의 로즈마리 추출물과 비교 분석함으로써 발효 추출 방법을 최적화하고 향후 새로운 건강 기능성 식품의 원료로써 활용 가능성을 탐색하고자 하였다. 로즈마리 발효물의 수율은 control에 비해 전체적으로 증가하는 경향을 보였고, 로즈마리 발효군의 pH는 control에 비해 유의적으로 낮아졌는데(
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition 2024; 53(7): 743-754
Published online July 31, 2024 https://doi.org/10.3746/jkfn.2024.53.7.743
Copyright © The Korean Society of Food Science and Nutrition.
이예빈․육홍선
충남대학교 식품영양학과
Department of Food and Nutrition, Chungnam National University
Correspondence to:Hong-Sun Yook, Department of Food and Nutrition, Chungnam National University, 99, Daehak-ro, Yuseong-gu, Daejeon 34134, Korea, E-mail: yhsuny@cnu.ac.kr
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
This study examined the fermented rosemary obtained using various microorganisms (Bacillus subtilis, BS; Saccharomyces cerevisiae, SC; Lacticaseibacillus casei, LC; Levilactobacillus brevis, LB; Lactiplantibacillus plantarum, LP). The total polyphenol content, total flavonoid content, DPPH radical scavenging, ABTS radical scavenging, and FRAP value of Rosmarinus officinalis L. fermented products was the highest in the LC fermented products (P<0.05). The antibacterial activities of all R. officinalis L. fermented products were better than the non-fermented group at a concentration of 5 mg/disc, 10 mg/disc (P<0.05) against Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa. The nitrite scavenging ability of all R. officinalis L. fermented products was better than the non-fermented group. The tyrosinase and elastase inhibition activities of R. officinalis L. fermented products were the highest in the LC fermented products. Therefore, fermented rosemary products are expected to be useful as natural ingredients for functional food.
Keywords: Rosmarinus officinalis L., fermentation, antioxidant, antibacterial, tyrosinase and elastase inhibition activity
허브란 ‘푸른 풀’이라는 뜻을 가진 라틴어의 헤르바(herba)에서 유래된 어원이며 줄기와 잎, 뿌리, 열매 등 다양한 부위가 유용하게 활용될 수 있는 식물의 총칭으로 불리고 있다(Ryoo와 Cha, 1998). 허브는 종류에 따라 특유의 맛과 향을 가지고 있어 주로 향신료로 이용되어 왔으나 허브 내 함유된 여러 기능 성분의 유용성이 알려지면서 이를 활용한 화장품, 건강 보조 식품, 항산화제 등으로써 사용량이 증가하고 있다(Choi 등, 2010). 식품첨가물로 사용되는 허브의 경우 식품의 기호성을 증진시킬 뿐만 아니라 미생물 작용에 의해 발생하는 식품의 부패 및 변질을 억제하는 데 도움을 줄 수 있는데, 근래에는 소비자들이 건강 지향적인 식품 섭취를 선호함에 따라 인공적으로 제조된 합성 보존료가 아닌 천연 성분을 이용한 보존료의 사용을 지향하게 되었고 식품의 안전성과 신선함을 동시에 만족시킬 수 있는 허브가 합성 보존료의 적합한 대체제로 각광받고 있다(Choi와 Rhim, 2010; Yoo 등, 2005).
로즈마리(
로즈마리 발효에 사용된 균주는
본 실험에 사용된 로즈마리(터키산)는 건조된 원물 형태를 2023년 8월 진성 BNF에서 구입하였고 이를 분말화한 뒤 -24°C에서 냉동보관 하면서 실험에 사용하였다. 로즈마리 발효물의 제조 과정은 250 mL의 증류수에 5 g의 glucose(Sigma-Aldrich Co.)와 1.25 g의 peptone(Life Technologies Corp.)을 넣고 교반한 뒤 121°C에서 15분 동안 가압 고온 멸균하여 실온에서 서서히 식힌 다음 로즈마리 분말 12.5 g과 미리 활성화한 5종의 발효 균주를 각각 2.5 mL 주입하였다.
로즈마리 발효물의 동결건조 수율은 제조한 발효 및 무발효 로즈마리 추출물을 동결건조하여 건조중량을 구한 후 추출물 조제 시 사용된 원료 중량에 대한 백분율(%)로 나타내었다.
균주 성장에 따른 발효액의 pH 변화는 24시간 배양 후 멸균된 발효액을 여과한 다음 pH meter(K2000-pH, iSTEK Inc.)를 이용하여 측정하였다. 혼탁도 측정은 24시간 배양 후 멸균 및 여과된 발효액을 600 nm에서 흡광도를 측정하여 미생물의 발효 정도를 확인하였다. 생균수 측정은 24시간 배양한 로즈마리 발효액을 멸균수에 희석하여 충분히 혼합한 후 BS, LB, LC, LP는 plate count agar(Difco Laboratories), SC는 potato dextrose agar(Difco Laboratories)에 분주한 다음 각각 37°C, 30°C에서 24~48시간 배양하여 생균수를 측정하였다.
총당 함량 측정은 phenol-sulfuric acid 방법(Cho 등, 2015)을 사용하여 측정하였다. 시료에 5% phenol(Junsei Chemical Co., Ltd.)과 sulfuric acid(H2SO4, Junsei Chemical Co., Ltd.)를 첨가하여 혼합하고 20분간 방치한 후 490 nm에서 흡광도를 측정하였다.
환원당 함량 측정은 DNS 방법(Meller, 1959)을 사용하여 측정하였다. 시료에 DNS 용액을 넣고 혼합한 후 10분간 끓는 물에서 반응시킨 뒤 5분간 냉각하여 550 nm에서 흡광도를 측정하였다. 총당과 환원당의 함량은 glucose(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 표준물질로 하여 검량선을 작성한 후 시료 100 mg에 대한 mg glucose equivalents(GE)로 나타내었다.
총 폴리페놀 함량 측정은 Folin과 Denis(1912)법을 응용하여 측정하였다. 시료에 Folin-Ciocalteu’s phenol reagent (Sigma-Aldrich Co.)와 증류수를 1:2(v/v)의 비율로 섞은 혼합액을 첨가하여 3분간 반응시킨 후 10% Na2CO3(w/v, Duksan Chemical Co., Ltd.) 용액을 섞어 1시간 동안 암실에서 반응시키고 765 nm에서 흡광도를 측정하였다. 결괏값은 gallic acid(Sigma-Aldrich Co.)를 사용하여 검량선을 작성한 후 시료 1 g에 대한 mg gallic acid equivalents(GAE)로 나타내었다.
총 플라보노이드 함량 측정은 Zhishen 등(1999)의 방법을 사용하여 측정하였다. 시료에 증류수와 5% NaNO2(w/v, Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 넣어 섞은 후 5분간 방치하였다. 이후 10% AlCl3・6H2O(w/v, Junsei Chemical Co., Ltd.)를 넣고 6분간 방치한 다음 1 M NaOH(Daejung Chemical & Metals Co., Ltd.)를 가하여 11분간 반응시킨 후 510 nm에서 흡광도를 측정하였다. 결괏값은 catechin hydrate(Sigma-Aldrich Co.)를 사용하여 검량선을 작성한 후 시료 1 g에 대한 mg catechin equivalents(CE)로 나타내었다.
2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl(DPPH) 라디칼 소거 활성은 Blois(1958)의 방법을 참고하여 측정하였다. 시료에 0.2 mM DPPH(Sigma-Aldrich Co.) solution을 첨가하여 혼합한 다음 암실에서 30분간 반응시킨 후 517 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조군은 시료 대신 시료 희석용매인 증류수를 사용하여 위와 같은 방법으로 흡광도를 측정하여 비교하였고, 결괏값은 대조군에 대한 시료 첨가군의 감소한 흡광도를 백분율(%)로 구한 후 IC50값으로 나타내었다. 양성대조군으로 기존의 항산화제인 ascorbic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 사용하여 비교하였다.
2,2′-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonate)(ABTS) 라디칼 소거 활성은 Fellegrini 등(1999)의 방법을 참고하여 측정하였다. ABTS solution은 140 mM K2S2O8(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)에 증류수를 가한 후 ABTS diammonium salt tablet(Sigma-Aldrich Co.) 2알을 넣어 암실에서 12~16시간 동안 방치하고 이를 95% 에탄올(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)과 혼합하여 734 nm에서 측정한 흡광도 값이 0.70±0.02가 되도록 조절하여 사용하였다. 시료에 ABTS solution 1 mL를 가한 후 2분 30초간 암실에서 반응시킨 다음 734 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조군은 시료 희석용매인 증류수를 사용하여 위와 같은 방법으로 흡광도를 측정하여 비교하였고, 결괏값은 대조군에 대한 시료 첨가군의 감소한 흡광도를 백분율(%)로 구한 후 IC50값으로 나타내었다. 양성대조군은 ascorbic acid를 사용하여 비교하였다.
Ferric reducing antioxidant power(FRAP) 측정 방법은 Benzie와 Strain(1996) 방법을 참고하여 측정하였다. FRAP solution은 300 mM acetate buffer(pH 3.6)와 40 mM HCl(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)에 용해한 10 mM 2,4,6-tris(2-pyridyl)-s-triazine(TPTZ, Sigma-Aldrich Co.), 20 mM FeCl3・6H2O(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 각각 10:1:1(v/v/v)의 비율로 섞은 후 37°C에서 10분간 반응시켜 제조한 후 사용하였다. 시료에 증류수와 FRAP solution을 넣고 37°C에서 10분간 반응시킨 후 593 nm에서 흡광도를 측정하였다. FRAP value는 FeSO4・7H2O(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 표준물질로 이용하여 작성한 검량선에 대입하여 환산하였으며, 시료 1 g에 들어있는 FeSO4・7H2O의 mM 함량으로 나타내었다.
항균 활성은 각 유해 균주를 대상으로 disc diffusion assay(Bauer 등, 1966)를 통해 측정하였다. 항균 활성 측정에 사용된 균주는 Gram positive bacteria인
Table 1 . List of strains used for antimicrobial experiments.
Strains | Media1) | Temp. (°C) | |
---|---|---|---|
Gram positive bacteria | NA/NB | 30 | |
NA/NB | 30 | ||
NA/NB | 30 | ||
Gram negative bacteria | NA/NB | 30 | |
NA/NB | 30 | ||
NA/NB | 37 | ||
NA/NB | 37 |
1)NA: nutrient agar, NB: nutrient broth..
아질산염 소거 활성 측정 방법은 Gray와 Dugan(1975)의 방법을 참고하여 측정하였다. 시료에 1 mM NaNO2(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)와 0.2 M citrate buffer(pH 3.0)를 가하고 37°C에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응시킨 혼합물에 2% acetic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.), Griess reagent(30% acetic acid를 이용하여 제조한 1% sulfanilic acid, 1% 1-naphthylamine을 사용 직전 1:1 비율로 섞어 제조)를 가하여 15분간 반응시킨 다음 520 nm에서 흡광도를 측정하였다. 양성대조군은 ascorbic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 사용하여 비교하였으며 결괏값은 시료 첨가군과 시료 무첨가군을 백분율(%)로 산출하여 나타내었다.
Tyrosinase 저해 활성은 Flurkey(1991)의 방법을 이용하여 측정하였다. 0.1 M potassium phosphate buffer(pH 6.8), 시료, 10 mM L-DOPA(dihydroxy-phenylalanine, Sigma-Aldrich Co.)를 넣고 혼합한 뒤 0.1 M potassium phosphate buffer(pH 6.8)에 용해한 효소액(mushroom tyrosinase, 100 unit/mL, Sigma-Aldrich Co.)을 첨가하여 37°C에서 15분간 반응시키고 475 nm에서 흡광도를 측정하였다. Kojic acid(Samchun Pure Chemical Co., Ltd.)를 양성대조군으로 사용하여 비교하였으며 tyrosinase 저해 활성은 시료 첨가군과 시료 무첨가군을 백분율(%)로 산출하여 나타내었다.
Elastase 저해 활성은 Kraunsoe 등(1996)의 방법을 참고하여 측정하였다. 0.2 M Tris-HCl buffer(pH 8.0), 시료, N-succinyl-(Ala)3-
모든 실험은 3회 이상 반복 실시하였고 자료의 통계처리는 SPSS 26.0(Statistical Package for the Social Sciences, SPSS Inc.)을 사용하여 평균과 표준편차로 나타내었다. 수율 결과를 제외한 모든 데이터는 일원배치 분산분석(one way ANOVA)을 통해 95% 유의수준에서 통계적 유의성(
5종의 유용 미생물로 발효시킨 로즈마리의 동결건조 수율은 Table 2에 나타내었다. 로즈마리 발효물의 수율은 BS 발효군이 53.64%로 가장 높게 나타났고 LP(52.81%), SC(52.41%), LB(51.73%), LC(34.17%), control(15.61%) 순으로 높은 수율을 보였으며 무발효 대조군인 control에 비해 로즈마리 발효군의 수율이 증가하는 경향을 보였다. 이는 Lee와 Yook(2023)의 눈개승마를 여러 유용 균주를 이용하여 발효한 연구에서 발효군의 수율이 가장 높게 나타났다는 보고와 일치하였고 눈개승마 발효군의 수율이 증가한 이유는 발효 과정 중 균주로부터 유도되는 여러 효소에 의해 대사산물 생성량이 증가한 것과 관련이 있을 것으로 추측된다고 보고하였다. 따라서 본 연구에서 로즈마리 발효군의 수율이 증가한 이유 또한 각 미생물이 로즈마리 내 유기화합물의 분해를 유도하여 여러 분해 산물이 생성된 것에 영향을 받은 것으로 판단된다.
Table 2 . The yield of fermented
Samples1) | Yield (%) |
---|---|
Control | 15.61 |
BS | 53.64 |
SC | 52.41 |
LC | 34.17 |
LB | 51.73 |
LP | 52.81 |
1)Control, non-fermented
로즈마리 발효 정도를 확인하기 위해 미생물별 24시간 발효시킨 로즈마리 발효액의 배양 특성 결과를 Table 3에 나타냈다. Hur 등(2014)은 발효 중 미생물에 의한 pH 변화가 식품 성분의 세포벽 분해 정도에 영향을 미치고 페놀성 화합물의 함량 및 구조의 변화를 유도하여 항산화 활성에 영향을 미칠 수 있다고 보고하였다. 본 연구에서 control의 pH는 5.66±0.01로 나타났고 발효군의 pH는 4.44~4.83 범위를 보여 로즈마리 발효 시 control에 비해 pH가 감소하는 것으로 나타났다(
Table 3 . pH value, turbidity, and viable cell count in the broth of fermented
Samples1) | pH | Turbidity2) | Viable cell count (log CFU/mL) |
---|---|---|---|
Control | 5.66±0.01a3)4) | 0.32±0.00e | - |
BS | 4.81±0.01c | 0.38±0.01d | 7.24±0.01e |
SC | 4.83±0.01b | 0.42±0.00c | 7.97±0.05b |
LC | 4.44±0.01f | 0.45±0.00a | 9.23±0.02a |
LB | 4.74±0.00d | 0.38±0.00d | 7.68±0.06d |
LP | 4.67±0.00e | 0.43±0.00b | 7.77±0.03c |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Turbidity measurement based on OD600 in the broth of
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different letters in a column differ significantly (
로즈마리 발효물의 혼탁도 분석 결과 control은 0.32±0.00으로 나타났고 발효군의 혼탁도는 0.38~0.45의 범위를 보여 로즈마리 발효 시 혼탁도가 유의적으로 증가했음을 확인하였다(
로즈마리 발효물이 미생물 생장에 영향을 미치는 정도를 판단하기 위해 로즈마리 발효액의 생균수를 측정했으며, 각 발효물의 생균수는 7.24~9.23 log CFU/mL로 나타났다. LC 발효군이 9.23±0.02 log CFU/mL로 가장 높았으며 이어서 SC(7.97±0.05 log CFU/mL), LP(7.77±0.03 log CFU/mL), LB (7.68±0.06 log CFU/mL), BS(7.24±0.01 log CFU/mL) 순으로 높은 생균수를 보였다. Kurmann과 Rasic(1991)은 체내에서 유용한 성분을 생성하기 위한 프로바이오틱스의 최소 미생물 개체 수는 105 CFU/mL 이상이어야 한다고 보고했으며, 본 연구에서는 모든 발효군에서 7 log CFU/mL 이상의 생균수를 보여 로즈마리 발효 과정 중 미생물 생장이 활발하게 진행되었음을 확인하였고 유용 균주들의 생장에 의해 다양한 생리활성 물질이 생성될 가능성이 있을 것으로 사료된다.
미생물별 로즈마리 발효물의 총당 및 환원당 측정 결과는 Table 4에 나타냈다. Control의 총당 함량은 29.27±0.19 GE mg/100 mg으로 나타났고 발효군은 53.88~90.21 GE mg/100 mg 범위를 보여 로즈마리를 발효했을 때 총당 함량이 전반적으로 증가하는 경향을 보였다(
Table 4 . Total sugars and reducing sugars of fermented
Samples1) | Total sugars (GE mg/100 mg2)) | Reducing sugars (GE mg/100 mg) |
---|---|---|
Control | 29.27±0.19e3)4) | 31.74±0.17e |
BS | 84.01±0.94c | 67.94±0.35c |
SC | 90.21±0.28a | 70.70±0.29a |
LC | 53.88±0.22d | 43.56±0.42d |
LB | 87.60±0.52b | 68.27±0.10c |
LP | 87.54±0.45b | 68.88±0.17b |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Glucose equivalent mg/100 mg..
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different superscripts (a-e) in a column indicate significant differences at
로즈마리 발효물의 균주별 폴리페놀 함량 측정 결과는 Table 5와 같으며, LC 발효군이 205.85±1.65 GAE mg/g으로 모든 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 값을 나타냈다(
Table 5 . Total phenolic contents and total flavonoid contents of fermented
Samples1) | Total phenolic contents (GAE mg/g2)) | Total flavonoid contents (CE mg/g3)) |
---|---|---|
Control | 149.72±1.65d4)5) | 55.91±1.14de |
BS | 159.63±1.65b | 71.64±1.14b |
SC | 152.47±0.95c | 58.53±1.14d |
LC | 205.85±1.65a | 120.15±1.97a |
LB | 149.17±0.95d | 54.60±1.14e |
LP | 154.12±0.95c | 64.43±2.27c |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Gallic acid equivalent mg/g..
3)Catechin equivalent mg/g..
4)Mean±SD (n=3)..
5)Different superscripts (a-d) in a column indicate significant differences at
로즈마리 발효물의 균주별 총 플라보노이드 함량 측정 결과는 Table 5에 나타냈으며, LC 발효군이 120.15±1.97 CE mg/g으로 모든 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 함량을 보였다(
로즈마리 발효물의 DPPH 라디칼 소거 활성 측정 결과는 50% 라디칼을 소거하는 시료 농도인 IC50값으로 Table 6에 나타냈다. 실험에 사용된 positive control인 ascorbic acid의 IC50값은 0.017±0.000 mg/mL로 나타났으며, LC 발효군의 IC50값은 0.067±0.001 mg/mL로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 낮은 값을 보였다(
Table 6 . DPPH and ABTS radical scavenging activity and ferric reducing antioxidant power (FRAP) value of fermented
Samples1) | DPPH radical scavenging activity IC50 (mg/mL)2) | ABTS radical scavenging activity IC50 (mg/mL) | FRAP value (mM/g) |
---|---|---|---|
Ascorbic acid | 0.017±0.000e3)4) | 0.12±0.00e | - |
Control | 0.092±0.001b | 0.69±0.00b | 1,398.28±46.22d |
BS | 0.091±0.001b | 0.68±0.00bc | 1,508.16±14.10b |
SC | 0.092±0.001b | 0.76±0.00a | 1,418.63±12.21cd |
LC | 0.067±0.001d | 0.50±0.01d | 2,330.20±61.45a |
LB | 0.095±0.001a | 0.76±0.00a | 1,386.07±14.10d |
LP | 0.089±0.000c | 0.68±0.01c | 1,463.40±7.05bc |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Inhibitory activity was expressed as the mean of 50% inhibitory concentration of triplicate determines, obtained by interpolation of concentration inhibition curve..
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different letters in a column differ significantly (
로즈마리 발효물의 ABTS 라디칼 소거 활성 측정 결과는 50% 라디칼을 소거하는 시료 농도인 IC50값으로 Table 6에 나타냈다. 실험에 사용된 positive control인 ascorbic acid의 IC50값은 0.12±0.00 mg/mL로 나타났으며, LC 발효군의 IC50값은 0.50±0.01 mg/mL로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 낮은 값을 보였다(
로즈마리 발효물의 균주별 FRAP 측정 결과는 Table 6에 나타냈다. LC 발효군의 FRAP 값은 2,330.20±61.45 mM/g으로 유의적으로 가장 높은 값을 보였고(
균주별 로즈마리 발효물의 항균 활성을 측정한 결과는 Table 7과 같으며 모든 로즈마리 발효 및 무발효군에서
Table 7 . Antibacterial activities of fermented
Microorganism | Size of clear zone (mm) | |
---|---|---|
Samples1) | Fraction conc. (mg/disc)2) | |
10.0 | ||
Control | -3) | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | 1.01±0.14*4) | |
SC | 1.09±0.08* | |
LC | 1.43±0.13* | |
LB | 1.13±0.13* | |
LP | 1.39±0.17* | |
Control | 1.11±0.08 | |
BS | 2.13±0.10* | |
SC | 1.65±0.13* | |
LC | 1.08±0.07 | |
LB | 1.14±0.09 | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | 2.07±0.10* | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | 6.98±0.38* | |
SC | 5.07±0.83* | |
LC | 9.04±0.55* | |
LB | 5.60±0.47* | |
LP | 6.56±0.21* |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Antibacterial activities was not measured at 5.0 mg/disc concentrations except for
3)Not detected: 0.00±0.00 mm..
4)Mean±SD (n=3)..
5)Antibacterial activities at 5.0 mg/disc concentration: control, not detected; BS, 2.99±0.06*; SC, 2.13±0.07*; LC, 5.48±0.40*; LB, 2.50±0.11*; LP, 2.78±0.11*..
*
본 연구에서 로즈마리 발효 및 무발효군의 아질산염 소거 활성을 측정한 결과는 Table 8과 같으며, 발효 및 무발효군과 ascorbic acid의 농도는 5 mg/mL로 제조하여 실험에 사용하였다. Positive control인 ascorbic acid의 아질산염 소거 활성은 97.27±0.22%로 나타났으며, LC 발효군이 82.18±0.16%로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 소거 활성을 보였다(
Table 8 . Nitrite scavenging ability, tyrosinase and elastase inhibition activity of fermented
Samples1) | Nitrite scavenging ability (%) | Tyrosinase inhibition activity (%) | Elastase inhibition activity (%) |
---|---|---|---|
Positive control2) | 97.27±0.22a3)4) | 99.82±0.15a | 81.14±1.23a |
Control | 61.79±1.08e | 28.90±1.32e | 43.80±0.60d |
BS | 74.31±0.59c | 41.32±0.95c | 47.39±0.66c |
SC | 70.99±0.75d | 27.84±0.70e | 38.51±0.46f |
LC | 82.18±0.16b | 84.23±2.71b | 53.44±0.49b |
LB | 70.61±1.03d | 14.63±1.73f | 39.69±0.40ef |
LP | 70.14±1.08d | 34.80±1.25d | 40.78±0.67e |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Nitrite scavenging ability: ascorbic acid, tyrosinase inhibition activity: kojic acid, elastase inhibition activity: ascorbic acid..
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different letters in a column differ significantly (
본 연구에서 로즈마리 발효 및 무발효군의 tyrosinase 저해 활성을 측정한 결과는 Table 8과 같으며, 발효 및 무발효군과 kojic acid의 농도는 1 mg/mL로 제조하여 실험에 사용하였다. Positive control인 kojic acid의 tyrosinase 저해 활성은 99.82±0.15%로 나타났으며, LC 발효군이 84.23±2.71%로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 저해 활성을 보였다(
본 연구에서 로즈마리 발효 및 무발효군의 elastase 저해 활성을 측정한 결과는 Table 8과 같으며, 발효 및 무발효군과 ascorbic acid의 농도는 1 mg/mL로 제조하여 실험에 사용하였다. Positive control인 ascorbic acid의 elastase 저해 활성은 81.14±1.23%로 나타났으며 LC 발효군이 53.44±0.49%로 로즈마리 발효 및 무발효군 중 유의적으로 가장 높은 저해 활성을 보였다(
본 연구는 다양한 생리적 기능성이 입증된 로즈마리에 5종의 유용 균주를 접종하여 발효시킨 뒤 각 발효물의 배양 특성과 항산화 활성을 기존의 로즈마리 추출물과 비교 분석함으로써 발효 추출 방법을 최적화하고 향후 새로운 건강 기능성 식품의 원료로써 활용 가능성을 탐색하고자 하였다. 로즈마리 발효물의 수율은 control에 비해 전체적으로 증가하는 경향을 보였고, 로즈마리 발효군의 pH는 control에 비해 유의적으로 낮아졌는데(
Table 1 . List of strains used for antimicrobial experiments.
Strains | Media1) | Temp. (°C) | |
---|---|---|---|
Gram positive bacteria | NA/NB | 30 | |
NA/NB | 30 | ||
NA/NB | 30 | ||
Gram negative bacteria | NA/NB | 30 | |
NA/NB | 30 | ||
NA/NB | 37 | ||
NA/NB | 37 |
1)NA: nutrient agar, NB: nutrient broth..
Table 2 . The yield of fermented
Samples1) | Yield (%) |
---|---|
Control | 15.61 |
BS | 53.64 |
SC | 52.41 |
LC | 34.17 |
LB | 51.73 |
LP | 52.81 |
1)Control, non-fermented
Table 3 . pH value, turbidity, and viable cell count in the broth of fermented
Samples1) | pH | Turbidity2) | Viable cell count (log CFU/mL) |
---|---|---|---|
Control | 5.66±0.01a3)4) | 0.32±0.00e | - |
BS | 4.81±0.01c | 0.38±0.01d | 7.24±0.01e |
SC | 4.83±0.01b | 0.42±0.00c | 7.97±0.05b |
LC | 4.44±0.01f | 0.45±0.00a | 9.23±0.02a |
LB | 4.74±0.00d | 0.38±0.00d | 7.68±0.06d |
LP | 4.67±0.00e | 0.43±0.00b | 7.77±0.03c |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Turbidity measurement based on OD600 in the broth of
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different letters in a column differ significantly (
Table 4 . Total sugars and reducing sugars of fermented
Samples1) | Total sugars (GE mg/100 mg2)) | Reducing sugars (GE mg/100 mg) |
---|---|---|
Control | 29.27±0.19e3)4) | 31.74±0.17e |
BS | 84.01±0.94c | 67.94±0.35c |
SC | 90.21±0.28a | 70.70±0.29a |
LC | 53.88±0.22d | 43.56±0.42d |
LB | 87.60±0.52b | 68.27±0.10c |
LP | 87.54±0.45b | 68.88±0.17b |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Glucose equivalent mg/100 mg..
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different superscripts (a-e) in a column indicate significant differences at
Table 5 . Total phenolic contents and total flavonoid contents of fermented
Samples1) | Total phenolic contents (GAE mg/g2)) | Total flavonoid contents (CE mg/g3)) |
---|---|---|
Control | 149.72±1.65d4)5) | 55.91±1.14de |
BS | 159.63±1.65b | 71.64±1.14b |
SC | 152.47±0.95c | 58.53±1.14d |
LC | 205.85±1.65a | 120.15±1.97a |
LB | 149.17±0.95d | 54.60±1.14e |
LP | 154.12±0.95c | 64.43±2.27c |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Gallic acid equivalent mg/g..
3)Catechin equivalent mg/g..
4)Mean±SD (n=3)..
5)Different superscripts (a-d) in a column indicate significant differences at
Table 6 . DPPH and ABTS radical scavenging activity and ferric reducing antioxidant power (FRAP) value of fermented
Samples1) | DPPH radical scavenging activity IC50 (mg/mL)2) | ABTS radical scavenging activity IC50 (mg/mL) | FRAP value (mM/g) |
---|---|---|---|
Ascorbic acid | 0.017±0.000e3)4) | 0.12±0.00e | - |
Control | 0.092±0.001b | 0.69±0.00b | 1,398.28±46.22d |
BS | 0.091±0.001b | 0.68±0.00bc | 1,508.16±14.10b |
SC | 0.092±0.001b | 0.76±0.00a | 1,418.63±12.21cd |
LC | 0.067±0.001d | 0.50±0.01d | 2,330.20±61.45a |
LB | 0.095±0.001a | 0.76±0.00a | 1,386.07±14.10d |
LP | 0.089±0.000c | 0.68±0.01c | 1,463.40±7.05bc |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Inhibitory activity was expressed as the mean of 50% inhibitory concentration of triplicate determines, obtained by interpolation of concentration inhibition curve..
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different letters in a column differ significantly (
Table 7 . Antibacterial activities of fermented
Microorganism | Size of clear zone (mm) | |
---|---|---|
Samples1) | Fraction conc. (mg/disc)2) | |
10.0 | ||
Control | -3) | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | 1.01±0.14*4) | |
SC | 1.09±0.08* | |
LC | 1.43±0.13* | |
LB | 1.13±0.13* | |
LP | 1.39±0.17* | |
Control | 1.11±0.08 | |
BS | 2.13±0.10* | |
SC | 1.65±0.13* | |
LC | 1.08±0.07 | |
LB | 1.14±0.09 | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | 2.07±0.10* | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | - | |
SC | - | |
LC | - | |
LB | - | |
LP | - | |
Control | - | |
BS | 6.98±0.38* | |
SC | 5.07±0.83* | |
LC | 9.04±0.55* | |
LB | 5.60±0.47* | |
LP | 6.56±0.21* |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Antibacterial activities was not measured at 5.0 mg/disc concentrations except for
3)Not detected: 0.00±0.00 mm..
4)Mean±SD (n=3)..
5)Antibacterial activities at 5.0 mg/disc concentration: control, not detected; BS, 2.99±0.06*; SC, 2.13±0.07*; LC, 5.48±0.40*; LB, 2.50±0.11*; LP, 2.78±0.11*..
*
Table 8 . Nitrite scavenging ability, tyrosinase and elastase inhibition activity of fermented
Samples1) | Nitrite scavenging ability (%) | Tyrosinase inhibition activity (%) | Elastase inhibition activity (%) |
---|---|---|---|
Positive control2) | 97.27±0.22a3)4) | 99.82±0.15a | 81.14±1.23a |
Control | 61.79±1.08e | 28.90±1.32e | 43.80±0.60d |
BS | 74.31±0.59c | 41.32±0.95c | 47.39±0.66c |
SC | 70.99±0.75d | 27.84±0.70e | 38.51±0.46f |
LC | 82.18±0.16b | 84.23±2.71b | 53.44±0.49b |
LB | 70.61±1.03d | 14.63±1.73f | 39.69±0.40ef |
LP | 70.14±1.08d | 34.80±1.25d | 40.78±0.67e |
1)Samples are the same as in Table 2..
2)Nitrite scavenging ability: ascorbic acid, tyrosinase inhibition activity: kojic acid, elastase inhibition activity: ascorbic acid..
3)Mean±SD (n=3)..
4)Different letters in a column differ significantly (
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