Ex) Article Title, Author, Keywords
Online ISSN 2288-5978
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Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition 2023; 52(12): 1256-1265
Published online December 31, 2023 https://doi.org/10.3746/jkfn.2023.52.12.1256
Copyright © The Korean Society of Food Science and Nutrition.
Department of Food Engineering, Daegu University
Correspondence to:Seong-Ho Kim, Department of Food Engineering, Daegu University, 201, Daegudae-ro, Jillyang-eup, Gyeongsan, Gyeongbuk 38453, Korea, E-mail: shkim64@daegu.ac.kr
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Previous studies on the bell flower root (Platycodon grandiflorum A. DC.) were conducted using hot water extraction under simple conditions or using organic solvents for enhancing efficacy, processing, and commercialization. However, this study investigated the optimal conditions for hot water extraction for utilizing each useful component of the bell flower root. The bell flower root hot water extraction conditions were optimized using a response surface methodology (RSM). A central composite design was applied to examine the effects of three independent variables, namely, solvent-to-sample ratio, extraction temperature, and extraction time. The extraction conditions were optimized with the characteristics of the extracts as a dependent variable. These characteristics included extraction yield, total sugar, reducing sugar contents, crude saponin contents, and platycodin D contents. The optimal conditions based on the superimposing of the four-dimensional RSM on the crude saponin and platycodin D contents under various conditions were established. As a result of verifying the significance of the predicted value of each component under optimal extraction conditions with the actual measured value, there was no significant difference between the predicted value and the actual measured value. It is expected that effective extraction and use of each component of the bell flower root extracts will be possible using these optimal extraction conditions.
Keywords: Platycodon grandiflorum A. DC., bell flower root, response surface methodology, hot water extracting, optimization
도라지(
도라지 뿌리 부분에는 다량의 사포닌이 함유되어 있는데, 이들 사포닌은 도라지의 특이 성분으로 platycodin A, C, D와 polygalacin D, spinasterol, spinasterol glucoside 등의 성분이 알려져 있다(Konishi 등, 1978; Li 등, 2010; Tada 등, 1975). 이 중 도라지의 platycodin D의 효능과 관련한 동물실험에서 항염증 효과(Kim 등, 2001), 간 손상 억제 효과(Lee와 Jeong, 2002), 항암 활성 효과(Kim 등, 2005), 혈당강하 및 콜레스테롤 저하 효과(Zhao 등, 2006), 항비만 효과(Lee 등, 2010) 등이 보고되었다. 도라지 뿌리와 관련한 생리활성 연구로는 고지방식이 흰쥐 간의 중성지방 저하 효과(Noh와 Kim, 1984), 혈청과 간의 지방질 개선 효과(Byun과 Seo, 2001), 암세포 접착저해 및 면역력 증강(Kim 등, 1998), 간독성에 대한 보호 효과(Choi 등, 2002), 혈당강하작용 및 콜레스테롤 대사의 개선작용(Seo 등 2004), 흑도라지의 항산화 및 항균 활성 연구(Lee 등, 2013b), 발효도라지의 호흡기질환 세균의 항균 활성 연구(Lee 등, 2016) 및 홍도라지 추출물의 마우스 비장세포 항염증 효과(Park 등, 2019) 등 다양한 생리활성이 보고되었다. 이러한 이유로 도라지 뿌리의 약리작용과 생리활성을 이용한 다양한 도라지 제품개발에 관한 연구가 수행되었다. 도라지를 활용한 제품과 관련한 연구로는 도라지 요구르트(Lee 등, 1998), 도라지 차(Lee 등, 2000), 도라지 캔디(Lee 등, 2001), 도라지 설기떡(Hwang과 Kim, 2007), 도라지 양갱(Park 등, 2009), 도라지 식혜(Jeong과 Yu, 2013), 도라지 쿠키(Jeong 등, 2013), 도라지 막걸리(Lee 등, 2018), 도라지 스펀지케이크(Hwang과 Kim, 2019), 도라지 식초(Gil 등, 2020) 및 도라지 젤리(Kim과 Youn, 2020) 등이 있다. 또한 도라지의 효능 및 품질 등과 관련한 다양한 가공처리법에 관한 연구로는 도라지의 쓴맛성분 저감을 위한 연구(Chang 등, 2015), 온도에 따른 도라지와 더덕의 이화학적 조성과 항산화적 특성 연구(Hwang 등, 2011), 증자와 발효 처리에 의한 도라지의 품질 특성 비교(Kim 등, 2015), 도라지 뿌리의 사포닌과 유리당 함량에 미치는 건조온도의 영향 연구(Lee와 Cho, 2014), 숙성온도와 시간에 따른 도라지의 이화학적 특성과 항산화 활성 연구(Lee 등, 2013a) 및 도라지의 사포닌과 무기질 함량에 미치는 건조 온도의 영향 연구(Lee 등, 2014) 등이 있다.
우리나라는 경제발전과 더불어 서구화된 식생활, 운동부족, 스트레스 및 환경오염 등에서 기인하는 각종 성인병 등으로 인하여 저칼로리 및 건강기능식품에 관한 관심의 증가와 함께 특히 효능을 갖는 식물성 식품에 관한 많은 연구가 수행되고 있다(Lee, 2020). 그러나 앞서 조사된 도라지 뿌리와 관련한 연구들은 약리적인 효능, 가공 및 제품화 등의 연구에 치중되어 있는바 도라지를 가공식품과 기능식품으로 활용하기 위하여 주로 전처리로 사용되고 있는 열수 추출에 관한 연구가 부족한 것으로 파악된다. 따라서 본 연구에서는 도라지 뿌리를 활용한 다양한 가공식품과 응용 제품화 관련 연구를 위하여 반응표면분석법을 활용하여 도라지 뿌리의 유용성분을 중심으로 도라지의 열수 최적 추출조건을 조사하였다.
본 연구에 사용된 도라지는 경북 안동에서 재배된 3년근 도라지의 뿌리 부분을 농업회사법인 (주)들산초에서 제공받아 전처리 후 실험에 사용하였다. 실험에 사용한 도라지의 일반성분은 도라지 100 g(wet weight basis) 중 수분 74.70 ±3.13%, 탄수화물 22.99±1.98%, 조단백 0.95±0.13%, 조지방 0.33±0.09%, 조회분 1.03±0.31%인 것을 사용하였다.
도라지를 세척한 뒤 껍질을 벗기고 두께 0.5 cm, 길이 5 cm가 되도록 절단하여 50°C dry oven에서 19시간 건조한 것을 분쇄기(HMF-3910SS, Hanil Electronic)로 분쇄하여 추출시험에 사용하였다.
전처리한 도라지의 추출은 환류냉각관을 부착한 추출장치를 이용하여 추출하였다. 도라지의 추출조건 최적화 분석은 반응표면 실험계획법(response surface methodology) (Myers 등, 2016)으로 추출에 영향을 미칠 수 있는 조건인 용매비, 추출온도, 추출시간을 각 독립변수(Table 1)로 하고 추출수율, 당 함량, 조사포닌 함량 및 platycodin D 함량 등을 반응변수로 설정하였다. 그에 따른 중심합성계획법(Wanasundara와 Shahidi, 1996)으로 코드화된 19구의 설정된 조건으로 조사하고(Table 2), 반응표면 회귀분석을 위해서는 statistical analysis system(SAS) program(SAS Institute, 2007)을 사용하였으며 변수들의 특성과 그에 상응하는 최적 추출조건은 예측된 모델식을 바탕으로 Mathematica program(Wolfram Research, 2014)을 이용하여 4차원 반응표면으로 나타내었다.
Table 1 . Levels of extraction conditions in experimental design
Variables | Symbols | Coded variables | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
−2 | −1 | 0 | 1 | 2 | ||
Solvent to sample ratio (mL/g) | X1 | 10 | 15 | 20 | 25 | 30 |
Temperature (°C) | X2 | 70 | 75 | 80 | 85 | 90 |
Time (h) | X3 | 1.00 | 2 | 3 | 4 | 5 |
Table 2 . Central composite design for the optimization of extraction condition
Exp. No. | Extraction condition | ||
---|---|---|---|
Solvent to sample ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | |
1 | 25(1) | 85(1) | 4(1) |
2 | 25(1) | 85(1) | 2(−1) |
3 | 25(1) | 75(−1) | 4(1) |
4 | 25(1) | 75(−1) | 2(−1) |
5 | 15(−1) | 85(1) | 4(1) |
6 | 15(−1) | 85(1) | 2(−1) |
7 | 15(−1) | 75(−1) | 4(1) |
8 | 15(−1) | 75(−1) | 2(−1) |
9 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
10 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
11 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
12 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
13 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
14 | 30(2) | 80(0) | 3(0) |
15 | 10(−2) | 80(0) | 3(0) |
16 | 20(0) | 90(2) | 3(0) |
17 | 20(0) | 70(−2) | 3(0) |
18 | 20(0) | 80(0) | 5(2) |
19 | 20(0) | 80(0) | 1(−2) |
도라지 추출액의 추출수율은 항량을 구한 수기에 추출물을 취하여 수기를 105°C에 건조시킨 후 그 항량된 무게를 측정하여 추출물 조제에 사용된 건물량에 대한 백분율로써 추출수율을 나타내었다.
추출물의 총당 함량은 phenol-sulfuric acid법(Saha와 Brewer, 1994)으로 측정하였다. 즉, 추출시료 용액 1 mL에 5%(v/v) 페놀 용액 1 mL와 95% 황산 5 mL를 가하여 발열시킨 후 30분 동안 상온에서 방치하였으며, 분광광도계(UVmini-1240, Shimadzu)를 이용하여 470 nm에서 흡광도를 측정하였다. 추출물의 환원당은 dinitrosalicylic acid (DNS)법(Miller, 1959)에 의해 측정하였다. 즉, 추출 시료액 0.5 mL에 DNS액 0.5 mL를 혼합한 뒤 끓는 물에서 5분 동안 반응시킨 후 방랭한 것을 분광광도계를 이용하여 570 nm에서 흡광도를 측정하였다. 총당 및 환원당 함량은 glucose(Sigma-aldrich Co.)를 표준물질로 사용하여 검량선을 작성한 후 시료의 함량을 환산하였다.
추출물의 조사포닌 함량은 n-부탄올 추출법(Shibata 등, 1965)을 변형하여 측정하였다. 즉, 열수 추출시료 30 mL에 diethyl ether 30 mL로 2회 반복 추출하여 지용성 성분을 제거한 후, 수포화 부탄올 30 mL를 가하여 3회 반복 추출한 후, 미리 항량된 농축 플라스크에 회수하여 감압 농축하고 105°C에서 건조, 항량하여 조사포닌 함량을 구하였다.
Platycodin D 함량 분석은 Park 등(2000)의 방법을 일부 변형하여 측정하였다. 즉, 추출물의 조사포닌 함량을 구한 건조 시료를 70% 에탄올 30 mL에 재용해하여 50°C 항온수조에서 2시간 동안 진탕하고, 이를 원심분리(1,957×
모든 반응변수는 회귀분석(regression analysis)과 분산분석(ANOVA)을 수행하였고, 이로부터 얻은 이차 회귀식을 통하여 반응모델의 적합성을 검증하였다. 추출조건별 도라지의 최적 추출조건 예측은 모든 반응변수의 4차원 반응표면을 superimposing 했을 때 중복되는 부분의 범위에서 최적 추출처리조건을 설정하였다. 또한 예측된 범위에서 임의의 점을 설정하여 회귀식에 대입한 후 그 예측된 값들에 대하여 동일조건에서 실제 실험을 통하여 얻은 실험치를 비교하고 SAS program의 Student’s one sample
도라지 추출물의 추출수율은 25.70~52.47%의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 추출수율에 대한 회귀식은 Table 4와 같다. 추출수율에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9664로 높은 신뢰도를 보였으며,
Table 3 . Experimental data on yield, total sugar, reducing sugar contents, crude saponin, and platycodin D of bell flower root extract under different extraction condition based on central composite design by response surface analysis
Exp. No. | Yield (%) | Total sugar contents (mg/mL) | Reducing sugar contents (mg/mL) | Crude saponin (%) | Platycodin D (mg/mL) |
---|---|---|---|---|---|
1 | 39.78±1.45 | 9.39±0.04 | 5.94±0.08 | 0.18±0.01 | 0.28±0.02 |
2 | 35.99±0.69 | 8.69±0.06 | 5.75±0.04 | 0.16±0.01 | 0.35±0.03 |
3 | 29.28±1.87 | 8.40±0.02 | 5.72±0.21 | 0.16±0.05 | 0.32±0.01 |
4 | 25.70±1.41 | 8.07±0.04 | 5.64±0.11 | 0.15±0.03 | 0.32±0.04 |
5 | 47.85±3.61 | 14.19±0.02 | 6.84±0.04 | 0.23±0.08 | 0.29±0.01 |
6 | 42.70±1.69 | 12.17±0.06 | 6.41±0.11 | 0.20±0.03 | 0.29±0.02 |
7 | 40.50±2.76 | 13.43±0.02 | 6.55±0.03 | 0.21±0.01 | 0.49±0.05 |
8 | 35.50±1.33 | 11.56±0.02 | 6.32±0.07 | 0.19±0.02 | 0.49±0.02 |
9 | 42.30±2.20 | 13.43±0.02 | 6.22±0.03 | 0.19±0.02 | 0.27±0.03 |
10 | 41.18±1.65 | 13.52±0.04 | 6.20±0.03 | 0.19±0.03 | 0.31±0.01 |
11 | 42.84±3.28 | 13.67±0.06 | 6.21±0.07 | 0.18±0.02 | 0.35±0.03 |
12 | 43.98±2.59 | 13.40±0.09 | 6.30±0.10 | 0.19±0.01 | 0.33±0.04 |
13 | 43.82±1.75 | 13.72±0.06 | 6.20±0.16 | 0.19±0.06 | 0.26±0.01 |
14 | 26.08±1.12 | 8.17±0.02 | 5.48±0.10 | 0.14±0.02 | 0.27±0.02 |
15 | 52.47±4.97 | 14.56±0.06 | 7.15±0.16 | 0.26±0.03 | 0.30±0.03 |
16 | 39.40±1.57 | 13.80±0.06 | 6.35±0.04 | 0.19±0.03 | 0.27±0.01 |
17 | 26.86±1.28 | 12.69±0.06 | 6.04±0.07 | 0.17±0.01 | 0.38±0.05 |
18 | 42.46±3.82 | 13.74±0.02 | 6.21±0.09 | 0.21±0.04 | 0.44±0.04 |
19 | 30.92±1.16 | 7.63±0.04 | 6.03±0.07 | 0.15±0.01 | 0.33±0.02 |
All values are mean±SD (n=3).
Table 4 . Polynomial equations calculated by RSM program for extraction conditions of bell flower root
Response | Second order polynomials | R2 | Significance |
---|---|---|---|
Yield | Y=−622.363750-1.869128X1+16.038736X2+12.806081X3-0.038141X12+0.031200X1X2-0.099591X22-0.069500X1X3+0.009000X2X3-1.599764X32 | 0.9664 | <0.0001 |
Total sugar contents | Y=14.127500-0.201291X1-0.000662X2-0.679527X3+0.002414X12-0.001900X1X2+0.000013514X22-0.0415005X1X3+0.040000X2X3-0.217162X32 | 0.9479 | <0.0001 |
Reducing sugar contents | Y=3.706875-0.057686X1+0.083132X2-0.152416X3+0.000670X12-0.000250X1X2-0.000530X22-0.009750X1X3+0.007750X2X3-0.031993X32 | 0.9817 | <0.0001 |
Crude saponin | Y=−0.282500-0.008291X1+0.013588X2-0.004527X3+0.000114X12+0X1X2-0.000086486X22-0.000500X1X3+0.000500X2X3-0.002162X32 | 0.9707 | <0.0001 |
Platycodin D | Y=783.512162-13.747176X1-17.156115X2+3.837466X3-0.005808X12+0.201000X1X2-0.094042X22-0.178000X1X3-0.185000X2X3+2.276047X32 | 0.7313 | 0.0759 |
Table 5 . Regression analysis for extraction conditions of bell flower root
Response | F-Ratio | ||
---|---|---|---|
Solvent ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | |
Yield | 33.55*** | 24.60*** | 10.67*** |
Total sugar contents | 36.63*** | 1.96 | 2.62 |
Reducing sugar contents | 109.40*** | 5.36** | 6.72*** |
Crude saponin | 56.67*** | 3.95** | 13.64*** |
Platycodin D | 3.26* | 5.45** | 1.58 |
*Significant at 10% level; **significant at 5% level; ***significant at 1% level.
Table 6 . Analysis of variance for response of dependent variables
Responses | Sources | DF1) | Sum of squares | Means squares | F-value | |
---|---|---|---|---|---|---|
Yield | Model | 9 | 997.581169 | 110.842352 | 28.73 | <0.0001 |
Linear | 3 | 821.58455 | 273.861516 | 70.98 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 170.147169 | 56.715723 | 14.7 | 0.0008 | |
Cross-product | 3 | 5.84945 | 1.94981666 | 0.51 | 0.6882 | |
Residual | 9.00 | 34.725926 | 3.858436 | - | - | |
Lack of fit | 5.00 | 29.420006 | 5.884001 | 4.44 | 0.087 | |
Pure error | 4 | 5.30592 | 1.32648 | - | - | |
Total | 18 | 1,032.31 | - | - | - | |
Total sugar contents | Model | 9 | 65.506091 | 7.27845455 | 18.2 | <0.0001 |
Linear | 3 | 63.332025 | 21.110675 | 52.8 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 1.491566 | 0.49718866 | 1.24 | 0.3502 | |
Cross-product | 3 | 0.6825 | 0.2275 | 0.57 | 0.6493 | |
Residual | 9 | 3.598572 | 0.399841 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 2.520052 | 0.50401 | 1.87 | 0.2821 | |
Pure error | 4 | 1.07852 | 0.26963 | - | - | |
Total | 18 | 69.104663 | - | - | - | |
Reducing sugar contents | Model | 9 | 2.856818 | 0.317424 | 53.55 | <0.0001 |
Linear | 3 | 2.782569 | 0.927523 | 156.47 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 0.042912 | 0.014304 | 2.41 | 0.134 | |
Cross-product | 3 | 0.031338 | 0.010446 | 1.76 | 0.2241 | |
Residual | 9 | 0.05335 | 0.005928 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 0.04623 | 0.00178 | 5.19 | 0.0678 | |
Pure error | 4 | 0.00712 | 0.005928 | - | - | |
Total | 18 | 2.910168 | - | - | - | |
Crude saponin | Model | 9 | 0.014795 | 0.00164388 | 33.08 | <0.0001 |
Linear | 3 | 0.01415 | 0.00471666 | 694.9 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 0.000545 | 0.00181666 | 3.65 | 0.0569 | |
Cross-product | 3 | 0.0001 | 0.00003333 | 0.67 | 0.5911 | |
Residual | 9 | 0.000447 | 0.0000497 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 0.000367 | 0.00007345 | 3.67 | 0.1158 | |
Pure error | 4 | 0.00008 | 0.00002 | - | - | |
Total | 18 | 0.015242 | - | - | - | |
Platycodin D | Model | 9 | 699.978632 | 77.7754035 | 3.51 | 0.0377 |
Linear | 3 | 350.32115 | 116.773716 | 5.27 | 0.0226 | |
Quadratic | 3 | 134.470682 | 44.8235606 | 2.02 | 0.1813 | |
Cross-product | 3 | 215.1868 | 71.7289333 | 3.24 | 0.1747 | |
Residual | 9 | 199.421642 | 22.15796 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 145.495762 | 2.16 | 2.16 | 0.238 | |
Pure error | 4 | 53.92588 | 13.48147 | - | - | |
Total | 18 | 899.400274 | - | - | - |
1)DF: Degree of freedom.
Table 7 . Predicted levels of optimum extraction conditions for the maximum responses of bell flower root by the ridge analysis
Response | Predicted response | Morphology | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
Response | Solvent ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | Result | ||
Yield | Min Max | 25.56 10.92 | 71.99 81.96 | 2.55 3.74 | 20.25 51.58 | maximum |
Total sugar contents | Min Max | 29.71 10.69 | 77.88 82.52 | 3.23 3.53 | 7.53 15.59 | saddle point |
Reducing sugar contents | Min Max | 29.54 10.63 | 77.88 82.52 | 77.36 82.02 | 5.45 7.15 | saddle point |
Crude saponin | Min Max | 27.23 10.79 | 77.43 81.59 | 1.72 3.71 | 0.14 0.26 | saddle point |
Platycodin D | Min Max | 13.66 14.42 | 77.73 62.63 | 2.93 3.76 | 0.19 0.53 | saddle point |
추출물의 총당 함량을 측정한 결과, 시험구에서 7.63~ 14.56 mg/mL의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 총당 함량에 대한 회귀식은 Table 4와 같다. 총당에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9479로 높은 신뢰도를 보였으며,
추출물의 환원당 함량은 5.48~7.15 mg/mL의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 회귀식은 Table 4와 같다. 환원당에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9817로 높은 신뢰도를 보였으며,
추출물의 조사포닌 함량을 측정한 결과, 19개구의 시료에서 0.14~0.26%의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 회귀식은 Table 4와 같다. 조사포닌에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9707로 높은 신뢰도를 보였으며,
Fig. 4와 같다. Chae 등(2018)은 열수 추출에서 3년근과 7년근 도라지의 조사포닌 함량이 각각 4.70 mg% 및 2.81 mg%라 보고하여 본 연구 결과의 범위보다 낮은 결과를 보였으며, Kang 등(2017)은 일반도라지와 으뜸도라지의 조사포닌 함량이 0.88%와 2.01%로 보고하여 본 연구 결과의 범위보다 높은 함량이었다. 또한 Kim 등(2015)은 증숙 전 도라지의 조사포닌 함량이 23.4 g/100 g에서 3회 증숙 후 발효한 도라지 분말의 조사포닌 함량이 47.1 g/100 g으로 증가한 결과로 증숙과 건조공정을 반복하면 조사포닌의 함량이 증가한다고 보고하였다. 또한 Lee(2012)는 흑도라지의 조사포닌이 증숙 전 4.45 g/100 g에서 증숙 후 7.98 g/100 g으로 증가한 결과에 대하여 증숙 작용으로 세포벽과 분자구조가 파괴되어 사포닌 추출효율이 증가하여 사포닌 함량이 증가하는 것으로 보고하였다. 본 연구와 이들 연구 결과로 유추했을 때 가열 처리와 같은 온도변화를 주는 도라지 가공처리 과정을 통하여 총당과 환원당 함량의 결과와 마찬가지로 조사포닌 함량에 영향을 줄 수 있는 것으로 판단된다.
추출물의 platycodin D 함량은 0.26~0.49 mg/mL의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 회귀식은 Table 4와 같다. Platycodin D 함량에 대한 회귀식의 R2 값은 0.7313이었으며,
도라지의 최적 추출조건을 설정하기 위해 추출물의 각 성분에 대한 4차원 반응표면을 superimposing한 결과(Fig. 7), 조사포닌 함량과 platycodin D 함량의 반응표면이 겹치는 것으로 나타났다. 겹치는 반응표면을 바탕으로 도라지 열수 추출의 최적 조건 범위를 산출한 결과, 용매비 15~20 mL/g, 추출시간 1.5~3.5시간, 추출온도 80~90°C로 나타났다(Table 8).
Table 8 . Superimposed response surface for optimization of platycodin D and crude saponin content as a function of extraction temperature, time, and solvent ratio
Extraction condition | Range of predicted condition |
---|---|
Solvent ratio (mL/g) | 17.5(15∼20) |
Temperature (°C) | 85(80∼90) |
Time (h) | 2.5(1.5∼3.5) |
각 성분의 반응표면을 superimposing 하여 예측된 최적 추출조건인 용매비 17.5 mL/g, 추출시간 2.5시간, 추출온도 85°C에서 실제 추출 및 실험을 수행하고 예측치와 실제 실험치의 비교를 통해 모델의 정확도를 검증한 결과는 Table 9와 같다. 그 결과, 최적 추출조건에서 총당과 환원당은 예측치보다 실험치가 다소 높게 나타났으며, 수율과 조사포닌 및 platycodin D 함량은 예측치보다 실험치가 다소 낮게 나타났다. Student
Table 9 . Comparison between predicted and observed values of response variables within the range of the optimum condition
Bell flower root extracts | ||||
---|---|---|---|---|
Predict value (A) | Experimental value (B) | B/A×100 (%) | ||
Yield (%) | 44.29 | 42.44±2.651) | 95.82 | 0.3501 |
Total sugar contents (mg/mL) | 12.19 | 12.68±1.89 | 104.02 | 0.6973 |
Reducing sugar contents (mg/mL) | 6.41 | 6.56±0.35 | 102.34 | 0.5352 |
Crude saponin (%) | 0.2 | 0.18±0.07 | 90 | 0.6697 |
Platycodin D (mg/mL) | 0.22 | 0.20±0.06 | 90.91 | 0.622 |
1)Values are mean±SD (n=3).
2)Student’s one sample
도라지 뿌리의 기존 연구는 효능, 가공 및 제품화를 위한 유기용매와 단순 조건에서 열수 추출을 행하였으나, 본 연구는 도라지 각각의 유용성분 활용을 위한 열수 최적 추출조건을 조사하였다. 본 연구에서는 도라지 열수 추출물의 주요 성분 함량 등을 측정하여 반응표면분석법으로 도라지의 최적 추출조건을 설정하였다. 실험계획은 중심합성 계획법으로 실시하여 3가지 독립변수로 용매비, 추출온도 및 추출시간을 설정하고, 종속변수로는 추출물의 추출수율, 총당, 환원당, 조사포닌 및 platycodin D 함량 등을 측정하여 추출조건을 최적화하였다. 조사포닌 함량과 platycodin D 함량의 4차원 반응표면을 superimposing 하여 최적 조건을 설정하였다. 최적 추출조건 각 항목의 예측값에 대한 실측값으로 유의성을 검증한 결과, 이론치와 실측치 사이에 유의적인 차이가 없는 것으로 나타나 본 연구의 최적 추출조건을 통하여 도라지 추출물의 각 성분에 대한 효과적인 추출과 이용이 가능할 것으로 사료된다.
이 논문은 2019학년도 대구대학교 학술연구비(과제번호 2019-0456) 지원에 의한 논문임.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition 2023; 52(12): 1256-1265
Published online December 31, 2023 https://doi.org/10.3746/jkfn.2023.52.12.1256
Copyright © The Korean Society of Food Science and Nutrition.
김 성 호
대구대학교 식품공학과
Department of Food Engineering, Daegu University
Correspondence to:Seong-Ho Kim, Department of Food Engineering, Daegu University, 201, Daegudae-ro, Jillyang-eup, Gyeongsan, Gyeongbuk 38453, Korea, E-mail: shkim64@daegu.ac.kr
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
Previous studies on the bell flower root (Platycodon grandiflorum A. DC.) were conducted using hot water extraction under simple conditions or using organic solvents for enhancing efficacy, processing, and commercialization. However, this study investigated the optimal conditions for hot water extraction for utilizing each useful component of the bell flower root. The bell flower root hot water extraction conditions were optimized using a response surface methodology (RSM). A central composite design was applied to examine the effects of three independent variables, namely, solvent-to-sample ratio, extraction temperature, and extraction time. The extraction conditions were optimized with the characteristics of the extracts as a dependent variable. These characteristics included extraction yield, total sugar, reducing sugar contents, crude saponin contents, and platycodin D contents. The optimal conditions based on the superimposing of the four-dimensional RSM on the crude saponin and platycodin D contents under various conditions were established. As a result of verifying the significance of the predicted value of each component under optimal extraction conditions with the actual measured value, there was no significant difference between the predicted value and the actual measured value. It is expected that effective extraction and use of each component of the bell flower root extracts will be possible using these optimal extraction conditions.
Keywords: Platycodon grandiflorum A. DC., bell flower root, response surface methodology, hot water extracting, optimization
도라지(
도라지 뿌리 부분에는 다량의 사포닌이 함유되어 있는데, 이들 사포닌은 도라지의 특이 성분으로 platycodin A, C, D와 polygalacin D, spinasterol, spinasterol glucoside 등의 성분이 알려져 있다(Konishi 등, 1978; Li 등, 2010; Tada 등, 1975). 이 중 도라지의 platycodin D의 효능과 관련한 동물실험에서 항염증 효과(Kim 등, 2001), 간 손상 억제 효과(Lee와 Jeong, 2002), 항암 활성 효과(Kim 등, 2005), 혈당강하 및 콜레스테롤 저하 효과(Zhao 등, 2006), 항비만 효과(Lee 등, 2010) 등이 보고되었다. 도라지 뿌리와 관련한 생리활성 연구로는 고지방식이 흰쥐 간의 중성지방 저하 효과(Noh와 Kim, 1984), 혈청과 간의 지방질 개선 효과(Byun과 Seo, 2001), 암세포 접착저해 및 면역력 증강(Kim 등, 1998), 간독성에 대한 보호 효과(Choi 등, 2002), 혈당강하작용 및 콜레스테롤 대사의 개선작용(Seo 등 2004), 흑도라지의 항산화 및 항균 활성 연구(Lee 등, 2013b), 발효도라지의 호흡기질환 세균의 항균 활성 연구(Lee 등, 2016) 및 홍도라지 추출물의 마우스 비장세포 항염증 효과(Park 등, 2019) 등 다양한 생리활성이 보고되었다. 이러한 이유로 도라지 뿌리의 약리작용과 생리활성을 이용한 다양한 도라지 제품개발에 관한 연구가 수행되었다. 도라지를 활용한 제품과 관련한 연구로는 도라지 요구르트(Lee 등, 1998), 도라지 차(Lee 등, 2000), 도라지 캔디(Lee 등, 2001), 도라지 설기떡(Hwang과 Kim, 2007), 도라지 양갱(Park 등, 2009), 도라지 식혜(Jeong과 Yu, 2013), 도라지 쿠키(Jeong 등, 2013), 도라지 막걸리(Lee 등, 2018), 도라지 스펀지케이크(Hwang과 Kim, 2019), 도라지 식초(Gil 등, 2020) 및 도라지 젤리(Kim과 Youn, 2020) 등이 있다. 또한 도라지의 효능 및 품질 등과 관련한 다양한 가공처리법에 관한 연구로는 도라지의 쓴맛성분 저감을 위한 연구(Chang 등, 2015), 온도에 따른 도라지와 더덕의 이화학적 조성과 항산화적 특성 연구(Hwang 등, 2011), 증자와 발효 처리에 의한 도라지의 품질 특성 비교(Kim 등, 2015), 도라지 뿌리의 사포닌과 유리당 함량에 미치는 건조온도의 영향 연구(Lee와 Cho, 2014), 숙성온도와 시간에 따른 도라지의 이화학적 특성과 항산화 활성 연구(Lee 등, 2013a) 및 도라지의 사포닌과 무기질 함량에 미치는 건조 온도의 영향 연구(Lee 등, 2014) 등이 있다.
우리나라는 경제발전과 더불어 서구화된 식생활, 운동부족, 스트레스 및 환경오염 등에서 기인하는 각종 성인병 등으로 인하여 저칼로리 및 건강기능식품에 관한 관심의 증가와 함께 특히 효능을 갖는 식물성 식품에 관한 많은 연구가 수행되고 있다(Lee, 2020). 그러나 앞서 조사된 도라지 뿌리와 관련한 연구들은 약리적인 효능, 가공 및 제품화 등의 연구에 치중되어 있는바 도라지를 가공식품과 기능식품으로 활용하기 위하여 주로 전처리로 사용되고 있는 열수 추출에 관한 연구가 부족한 것으로 파악된다. 따라서 본 연구에서는 도라지 뿌리를 활용한 다양한 가공식품과 응용 제품화 관련 연구를 위하여 반응표면분석법을 활용하여 도라지 뿌리의 유용성분을 중심으로 도라지의 열수 최적 추출조건을 조사하였다.
본 연구에 사용된 도라지는 경북 안동에서 재배된 3년근 도라지의 뿌리 부분을 농업회사법인 (주)들산초에서 제공받아 전처리 후 실험에 사용하였다. 실험에 사용한 도라지의 일반성분은 도라지 100 g(wet weight basis) 중 수분 74.70 ±3.13%, 탄수화물 22.99±1.98%, 조단백 0.95±0.13%, 조지방 0.33±0.09%, 조회분 1.03±0.31%인 것을 사용하였다.
도라지를 세척한 뒤 껍질을 벗기고 두께 0.5 cm, 길이 5 cm가 되도록 절단하여 50°C dry oven에서 19시간 건조한 것을 분쇄기(HMF-3910SS, Hanil Electronic)로 분쇄하여 추출시험에 사용하였다.
전처리한 도라지의 추출은 환류냉각관을 부착한 추출장치를 이용하여 추출하였다. 도라지의 추출조건 최적화 분석은 반응표면 실험계획법(response surface methodology) (Myers 등, 2016)으로 추출에 영향을 미칠 수 있는 조건인 용매비, 추출온도, 추출시간을 각 독립변수(Table 1)로 하고 추출수율, 당 함량, 조사포닌 함량 및 platycodin D 함량 등을 반응변수로 설정하였다. 그에 따른 중심합성계획법(Wanasundara와 Shahidi, 1996)으로 코드화된 19구의 설정된 조건으로 조사하고(Table 2), 반응표면 회귀분석을 위해서는 statistical analysis system(SAS) program(SAS Institute, 2007)을 사용하였으며 변수들의 특성과 그에 상응하는 최적 추출조건은 예측된 모델식을 바탕으로 Mathematica program(Wolfram Research, 2014)을 이용하여 4차원 반응표면으로 나타내었다.
Table 1 . Levels of extraction conditions in experimental design.
Variables | Symbols | Coded variables | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
−2 | −1 | 0 | 1 | 2 | ||
Solvent to sample ratio (mL/g) | X1 | 10 | 15 | 20 | 25 | 30 |
Temperature (°C) | X2 | 70 | 75 | 80 | 85 | 90 |
Time (h) | X3 | 1.00 | 2 | 3 | 4 | 5 |
Table 2 . Central composite design for the optimization of extraction condition.
Exp. No. | Extraction condition | ||
---|---|---|---|
Solvent to sample ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | |
1 | 25(1) | 85(1) | 4(1) |
2 | 25(1) | 85(1) | 2(−1) |
3 | 25(1) | 75(−1) | 4(1) |
4 | 25(1) | 75(−1) | 2(−1) |
5 | 15(−1) | 85(1) | 4(1) |
6 | 15(−1) | 85(1) | 2(−1) |
7 | 15(−1) | 75(−1) | 4(1) |
8 | 15(−1) | 75(−1) | 2(−1) |
9 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
10 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
11 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
12 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
13 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
14 | 30(2) | 80(0) | 3(0) |
15 | 10(−2) | 80(0) | 3(0) |
16 | 20(0) | 90(2) | 3(0) |
17 | 20(0) | 70(−2) | 3(0) |
18 | 20(0) | 80(0) | 5(2) |
19 | 20(0) | 80(0) | 1(−2) |
도라지 추출액의 추출수율은 항량을 구한 수기에 추출물을 취하여 수기를 105°C에 건조시킨 후 그 항량된 무게를 측정하여 추출물 조제에 사용된 건물량에 대한 백분율로써 추출수율을 나타내었다.
추출물의 총당 함량은 phenol-sulfuric acid법(Saha와 Brewer, 1994)으로 측정하였다. 즉, 추출시료 용액 1 mL에 5%(v/v) 페놀 용액 1 mL와 95% 황산 5 mL를 가하여 발열시킨 후 30분 동안 상온에서 방치하였으며, 분광광도계(UVmini-1240, Shimadzu)를 이용하여 470 nm에서 흡광도를 측정하였다. 추출물의 환원당은 dinitrosalicylic acid (DNS)법(Miller, 1959)에 의해 측정하였다. 즉, 추출 시료액 0.5 mL에 DNS액 0.5 mL를 혼합한 뒤 끓는 물에서 5분 동안 반응시킨 후 방랭한 것을 분광광도계를 이용하여 570 nm에서 흡광도를 측정하였다. 총당 및 환원당 함량은 glucose(Sigma-aldrich Co.)를 표준물질로 사용하여 검량선을 작성한 후 시료의 함량을 환산하였다.
추출물의 조사포닌 함량은 n-부탄올 추출법(Shibata 등, 1965)을 변형하여 측정하였다. 즉, 열수 추출시료 30 mL에 diethyl ether 30 mL로 2회 반복 추출하여 지용성 성분을 제거한 후, 수포화 부탄올 30 mL를 가하여 3회 반복 추출한 후, 미리 항량된 농축 플라스크에 회수하여 감압 농축하고 105°C에서 건조, 항량하여 조사포닌 함량을 구하였다.
Platycodin D 함량 분석은 Park 등(2000)의 방법을 일부 변형하여 측정하였다. 즉, 추출물의 조사포닌 함량을 구한 건조 시료를 70% 에탄올 30 mL에 재용해하여 50°C 항온수조에서 2시간 동안 진탕하고, 이를 원심분리(1,957×
모든 반응변수는 회귀분석(regression analysis)과 분산분석(ANOVA)을 수행하였고, 이로부터 얻은 이차 회귀식을 통하여 반응모델의 적합성을 검증하였다. 추출조건별 도라지의 최적 추출조건 예측은 모든 반응변수의 4차원 반응표면을 superimposing 했을 때 중복되는 부분의 범위에서 최적 추출처리조건을 설정하였다. 또한 예측된 범위에서 임의의 점을 설정하여 회귀식에 대입한 후 그 예측된 값들에 대하여 동일조건에서 실제 실험을 통하여 얻은 실험치를 비교하고 SAS program의 Student’s one sample
도라지 추출물의 추출수율은 25.70~52.47%의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 추출수율에 대한 회귀식은 Table 4와 같다. 추출수율에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9664로 높은 신뢰도를 보였으며,
Table 3 . Experimental data on yield, total sugar, reducing sugar contents, crude saponin, and platycodin D of bell flower root extract under different extraction condition based on central composite design by response surface analysis.
Exp. No. | Yield (%) | Total sugar contents (mg/mL) | Reducing sugar contents (mg/mL) | Crude saponin (%) | Platycodin D (mg/mL) |
---|---|---|---|---|---|
1 | 39.78±1.45 | 9.39±0.04 | 5.94±0.08 | 0.18±0.01 | 0.28±0.02 |
2 | 35.99±0.69 | 8.69±0.06 | 5.75±0.04 | 0.16±0.01 | 0.35±0.03 |
3 | 29.28±1.87 | 8.40±0.02 | 5.72±0.21 | 0.16±0.05 | 0.32±0.01 |
4 | 25.70±1.41 | 8.07±0.04 | 5.64±0.11 | 0.15±0.03 | 0.32±0.04 |
5 | 47.85±3.61 | 14.19±0.02 | 6.84±0.04 | 0.23±0.08 | 0.29±0.01 |
6 | 42.70±1.69 | 12.17±0.06 | 6.41±0.11 | 0.20±0.03 | 0.29±0.02 |
7 | 40.50±2.76 | 13.43±0.02 | 6.55±0.03 | 0.21±0.01 | 0.49±0.05 |
8 | 35.50±1.33 | 11.56±0.02 | 6.32±0.07 | 0.19±0.02 | 0.49±0.02 |
9 | 42.30±2.20 | 13.43±0.02 | 6.22±0.03 | 0.19±0.02 | 0.27±0.03 |
10 | 41.18±1.65 | 13.52±0.04 | 6.20±0.03 | 0.19±0.03 | 0.31±0.01 |
11 | 42.84±3.28 | 13.67±0.06 | 6.21±0.07 | 0.18±0.02 | 0.35±0.03 |
12 | 43.98±2.59 | 13.40±0.09 | 6.30±0.10 | 0.19±0.01 | 0.33±0.04 |
13 | 43.82±1.75 | 13.72±0.06 | 6.20±0.16 | 0.19±0.06 | 0.26±0.01 |
14 | 26.08±1.12 | 8.17±0.02 | 5.48±0.10 | 0.14±0.02 | 0.27±0.02 |
15 | 52.47±4.97 | 14.56±0.06 | 7.15±0.16 | 0.26±0.03 | 0.30±0.03 |
16 | 39.40±1.57 | 13.80±0.06 | 6.35±0.04 | 0.19±0.03 | 0.27±0.01 |
17 | 26.86±1.28 | 12.69±0.06 | 6.04±0.07 | 0.17±0.01 | 0.38±0.05 |
18 | 42.46±3.82 | 13.74±0.02 | 6.21±0.09 | 0.21±0.04 | 0.44±0.04 |
19 | 30.92±1.16 | 7.63±0.04 | 6.03±0.07 | 0.15±0.01 | 0.33±0.02 |
All values are mean±SD (n=3)..
Table 4 . Polynomial equations calculated by RSM program for extraction conditions of bell flower root.
Response | Second order polynomials | R2 | Significance |
---|---|---|---|
Yield | Y=−622.363750-1.869128X1+16.038736X2+12.806081X3-0.038141X12+0.031200X1X2-0.099591X22-0.069500X1X3+0.009000X2X3-1.599764X32 | 0.9664 | <0.0001 |
Total sugar contents | Y=14.127500-0.201291X1-0.000662X2-0.679527X3+0.002414X12-0.001900X1X2+0.000013514X22-0.0415005X1X3+0.040000X2X3-0.217162X32 | 0.9479 | <0.0001 |
Reducing sugar contents | Y=3.706875-0.057686X1+0.083132X2-0.152416X3+0.000670X12-0.000250X1X2-0.000530X22-0.009750X1X3+0.007750X2X3-0.031993X32 | 0.9817 | <0.0001 |
Crude saponin | Y=−0.282500-0.008291X1+0.013588X2-0.004527X3+0.000114X12+0X1X2-0.000086486X22-0.000500X1X3+0.000500X2X3-0.002162X32 | 0.9707 | <0.0001 |
Platycodin D | Y=783.512162-13.747176X1-17.156115X2+3.837466X3-0.005808X12+0.201000X1X2-0.094042X22-0.178000X1X3-0.185000X2X3+2.276047X32 | 0.7313 | 0.0759 |
Table 5 . Regression analysis for extraction conditions of bell flower root.
Response | F-Ratio | ||
---|---|---|---|
Solvent ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | |
Yield | 33.55*** | 24.60*** | 10.67*** |
Total sugar contents | 36.63*** | 1.96 | 2.62 |
Reducing sugar contents | 109.40*** | 5.36** | 6.72*** |
Crude saponin | 56.67*** | 3.95** | 13.64*** |
Platycodin D | 3.26* | 5.45** | 1.58 |
*Significant at 10% level; **significant at 5% level; ***significant at 1% level..
Table 6 . Analysis of variance for response of dependent variables.
Responses | Sources | DF1) | Sum of squares | Means squares | F-value | |
---|---|---|---|---|---|---|
Yield | Model | 9 | 997.581169 | 110.842352 | 28.73 | <0.0001 |
Linear | 3 | 821.58455 | 273.861516 | 70.98 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 170.147169 | 56.715723 | 14.7 | 0.0008 | |
Cross-product | 3 | 5.84945 | 1.94981666 | 0.51 | 0.6882 | |
Residual | 9.00 | 34.725926 | 3.858436 | - | - | |
Lack of fit | 5.00 | 29.420006 | 5.884001 | 4.44 | 0.087 | |
Pure error | 4 | 5.30592 | 1.32648 | - | - | |
Total | 18 | 1,032.31 | - | - | - | |
Total sugar contents | Model | 9 | 65.506091 | 7.27845455 | 18.2 | <0.0001 |
Linear | 3 | 63.332025 | 21.110675 | 52.8 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 1.491566 | 0.49718866 | 1.24 | 0.3502 | |
Cross-product | 3 | 0.6825 | 0.2275 | 0.57 | 0.6493 | |
Residual | 9 | 3.598572 | 0.399841 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 2.520052 | 0.50401 | 1.87 | 0.2821 | |
Pure error | 4 | 1.07852 | 0.26963 | - | - | |
Total | 18 | 69.104663 | - | - | - | |
Reducing sugar contents | Model | 9 | 2.856818 | 0.317424 | 53.55 | <0.0001 |
Linear | 3 | 2.782569 | 0.927523 | 156.47 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 0.042912 | 0.014304 | 2.41 | 0.134 | |
Cross-product | 3 | 0.031338 | 0.010446 | 1.76 | 0.2241 | |
Residual | 9 | 0.05335 | 0.005928 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 0.04623 | 0.00178 | 5.19 | 0.0678 | |
Pure error | 4 | 0.00712 | 0.005928 | - | - | |
Total | 18 | 2.910168 | - | - | - | |
Crude saponin | Model | 9 | 0.014795 | 0.00164388 | 33.08 | <0.0001 |
Linear | 3 | 0.01415 | 0.00471666 | 694.9 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 0.000545 | 0.00181666 | 3.65 | 0.0569 | |
Cross-product | 3 | 0.0001 | 0.00003333 | 0.67 | 0.5911 | |
Residual | 9 | 0.000447 | 0.0000497 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 0.000367 | 0.00007345 | 3.67 | 0.1158 | |
Pure error | 4 | 0.00008 | 0.00002 | - | - | |
Total | 18 | 0.015242 | - | - | - | |
Platycodin D | Model | 9 | 699.978632 | 77.7754035 | 3.51 | 0.0377 |
Linear | 3 | 350.32115 | 116.773716 | 5.27 | 0.0226 | |
Quadratic | 3 | 134.470682 | 44.8235606 | 2.02 | 0.1813 | |
Cross-product | 3 | 215.1868 | 71.7289333 | 3.24 | 0.1747 | |
Residual | 9 | 199.421642 | 22.15796 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 145.495762 | 2.16 | 2.16 | 0.238 | |
Pure error | 4 | 53.92588 | 13.48147 | - | - | |
Total | 18 | 899.400274 | - | - | - |
1)DF: Degree of freedom..
Table 7 . Predicted levels of optimum extraction conditions for the maximum responses of bell flower root by the ridge analysis.
Response | Predicted response | Morphology | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
Response | Solvent ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | Result | ||
Yield | Min Max | 25.56 10.92 | 71.99 81.96 | 2.55 3.74 | 20.25 51.58 | maximum |
Total sugar contents | Min Max | 29.71 10.69 | 77.88 82.52 | 3.23 3.53 | 7.53 15.59 | saddle point |
Reducing sugar contents | Min Max | 29.54 10.63 | 77.88 82.52 | 77.36 82.02 | 5.45 7.15 | saddle point |
Crude saponin | Min Max | 27.23 10.79 | 77.43 81.59 | 1.72 3.71 | 0.14 0.26 | saddle point |
Platycodin D | Min Max | 13.66 14.42 | 77.73 62.63 | 2.93 3.76 | 0.19 0.53 | saddle point |
추출물의 총당 함량을 측정한 결과, 시험구에서 7.63~ 14.56 mg/mL의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 총당 함량에 대한 회귀식은 Table 4와 같다. 총당에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9479로 높은 신뢰도를 보였으며,
추출물의 환원당 함량은 5.48~7.15 mg/mL의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 회귀식은 Table 4와 같다. 환원당에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9817로 높은 신뢰도를 보였으며,
추출물의 조사포닌 함량을 측정한 결과, 19개구의 시료에서 0.14~0.26%의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 회귀식은 Table 4와 같다. 조사포닌에 대한 회귀식의 R2 값은 0.9707로 높은 신뢰도를 보였으며,
Fig. 4와 같다. Chae 등(2018)은 열수 추출에서 3년근과 7년근 도라지의 조사포닌 함량이 각각 4.70 mg% 및 2.81 mg%라 보고하여 본 연구 결과의 범위보다 낮은 결과를 보였으며, Kang 등(2017)은 일반도라지와 으뜸도라지의 조사포닌 함량이 0.88%와 2.01%로 보고하여 본 연구 결과의 범위보다 높은 함량이었다. 또한 Kim 등(2015)은 증숙 전 도라지의 조사포닌 함량이 23.4 g/100 g에서 3회 증숙 후 발효한 도라지 분말의 조사포닌 함량이 47.1 g/100 g으로 증가한 결과로 증숙과 건조공정을 반복하면 조사포닌의 함량이 증가한다고 보고하였다. 또한 Lee(2012)는 흑도라지의 조사포닌이 증숙 전 4.45 g/100 g에서 증숙 후 7.98 g/100 g으로 증가한 결과에 대하여 증숙 작용으로 세포벽과 분자구조가 파괴되어 사포닌 추출효율이 증가하여 사포닌 함량이 증가하는 것으로 보고하였다. 본 연구와 이들 연구 결과로 유추했을 때 가열 처리와 같은 온도변화를 주는 도라지 가공처리 과정을 통하여 총당과 환원당 함량의 결과와 마찬가지로 조사포닌 함량에 영향을 줄 수 있는 것으로 판단된다.
추출물의 platycodin D 함량은 0.26~0.49 mg/mL의 범위로 나타났으며(Table 3), 이를 바탕으로 한 회귀식은 Table 4와 같다. Platycodin D 함량에 대한 회귀식의 R2 값은 0.7313이었으며,
도라지의 최적 추출조건을 설정하기 위해 추출물의 각 성분에 대한 4차원 반응표면을 superimposing한 결과(Fig. 7), 조사포닌 함량과 platycodin D 함량의 반응표면이 겹치는 것으로 나타났다. 겹치는 반응표면을 바탕으로 도라지 열수 추출의 최적 조건 범위를 산출한 결과, 용매비 15~20 mL/g, 추출시간 1.5~3.5시간, 추출온도 80~90°C로 나타났다(Table 8).
Table 8 . Superimposed response surface for optimization of platycodin D and crude saponin content as a function of extraction temperature, time, and solvent ratio.
Extraction condition | Range of predicted condition |
---|---|
Solvent ratio (mL/g) | 17.5(15∼20) |
Temperature (°C) | 85(80∼90) |
Time (h) | 2.5(1.5∼3.5) |
각 성분의 반응표면을 superimposing 하여 예측된 최적 추출조건인 용매비 17.5 mL/g, 추출시간 2.5시간, 추출온도 85°C에서 실제 추출 및 실험을 수행하고 예측치와 실제 실험치의 비교를 통해 모델의 정확도를 검증한 결과는 Table 9와 같다. 그 결과, 최적 추출조건에서 총당과 환원당은 예측치보다 실험치가 다소 높게 나타났으며, 수율과 조사포닌 및 platycodin D 함량은 예측치보다 실험치가 다소 낮게 나타났다. Student
Table 9 . Comparison between predicted and observed values of response variables within the range of the optimum condition.
Bell flower root extracts | ||||
---|---|---|---|---|
Predict value (A) | Experimental value (B) | B/A×100 (%) | ||
Yield (%) | 44.29 | 42.44±2.651) | 95.82 | 0.3501 |
Total sugar contents (mg/mL) | 12.19 | 12.68±1.89 | 104.02 | 0.6973 |
Reducing sugar contents (mg/mL) | 6.41 | 6.56±0.35 | 102.34 | 0.5352 |
Crude saponin (%) | 0.2 | 0.18±0.07 | 90 | 0.6697 |
Platycodin D (mg/mL) | 0.22 | 0.20±0.06 | 90.91 | 0.622 |
1)Values are mean±SD (n=3)..
2)Student’s one sample
도라지 뿌리의 기존 연구는 효능, 가공 및 제품화를 위한 유기용매와 단순 조건에서 열수 추출을 행하였으나, 본 연구는 도라지 각각의 유용성분 활용을 위한 열수 최적 추출조건을 조사하였다. 본 연구에서는 도라지 열수 추출물의 주요 성분 함량 등을 측정하여 반응표면분석법으로 도라지의 최적 추출조건을 설정하였다. 실험계획은 중심합성 계획법으로 실시하여 3가지 독립변수로 용매비, 추출온도 및 추출시간을 설정하고, 종속변수로는 추출물의 추출수율, 총당, 환원당, 조사포닌 및 platycodin D 함량 등을 측정하여 추출조건을 최적화하였다. 조사포닌 함량과 platycodin D 함량의 4차원 반응표면을 superimposing 하여 최적 조건을 설정하였다. 최적 추출조건 각 항목의 예측값에 대한 실측값으로 유의성을 검증한 결과, 이론치와 실측치 사이에 유의적인 차이가 없는 것으로 나타나 본 연구의 최적 추출조건을 통하여 도라지 추출물의 각 성분에 대한 효과적인 추출과 이용이 가능할 것으로 사료된다.
이 논문은 2019학년도 대구대학교 학술연구비(과제번호 2019-0456) 지원에 의한 논문임.
Table 1 . Levels of extraction conditions in experimental design.
Variables | Symbols | Coded variables | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
−2 | −1 | 0 | 1 | 2 | ||
Solvent to sample ratio (mL/g) | X1 | 10 | 15 | 20 | 25 | 30 |
Temperature (°C) | X2 | 70 | 75 | 80 | 85 | 90 |
Time (h) | X3 | 1.00 | 2 | 3 | 4 | 5 |
Table 2 . Central composite design for the optimization of extraction condition.
Exp. No. | Extraction condition | ||
---|---|---|---|
Solvent to sample ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | |
1 | 25(1) | 85(1) | 4(1) |
2 | 25(1) | 85(1) | 2(−1) |
3 | 25(1) | 75(−1) | 4(1) |
4 | 25(1) | 75(−1) | 2(−1) |
5 | 15(−1) | 85(1) | 4(1) |
6 | 15(−1) | 85(1) | 2(−1) |
7 | 15(−1) | 75(−1) | 4(1) |
8 | 15(−1) | 75(−1) | 2(−1) |
9 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
10 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
11 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
12 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
13 | 20(0) | 80(0) | 3(0) |
14 | 30(2) | 80(0) | 3(0) |
15 | 10(−2) | 80(0) | 3(0) |
16 | 20(0) | 90(2) | 3(0) |
17 | 20(0) | 70(−2) | 3(0) |
18 | 20(0) | 80(0) | 5(2) |
19 | 20(0) | 80(0) | 1(−2) |
Table 3 . Experimental data on yield, total sugar, reducing sugar contents, crude saponin, and platycodin D of bell flower root extract under different extraction condition based on central composite design by response surface analysis.
Exp. No. | Yield (%) | Total sugar contents (mg/mL) | Reducing sugar contents (mg/mL) | Crude saponin (%) | Platycodin D (mg/mL) |
---|---|---|---|---|---|
1 | 39.78±1.45 | 9.39±0.04 | 5.94±0.08 | 0.18±0.01 | 0.28±0.02 |
2 | 35.99±0.69 | 8.69±0.06 | 5.75±0.04 | 0.16±0.01 | 0.35±0.03 |
3 | 29.28±1.87 | 8.40±0.02 | 5.72±0.21 | 0.16±0.05 | 0.32±0.01 |
4 | 25.70±1.41 | 8.07±0.04 | 5.64±0.11 | 0.15±0.03 | 0.32±0.04 |
5 | 47.85±3.61 | 14.19±0.02 | 6.84±0.04 | 0.23±0.08 | 0.29±0.01 |
6 | 42.70±1.69 | 12.17±0.06 | 6.41±0.11 | 0.20±0.03 | 0.29±0.02 |
7 | 40.50±2.76 | 13.43±0.02 | 6.55±0.03 | 0.21±0.01 | 0.49±0.05 |
8 | 35.50±1.33 | 11.56±0.02 | 6.32±0.07 | 0.19±0.02 | 0.49±0.02 |
9 | 42.30±2.20 | 13.43±0.02 | 6.22±0.03 | 0.19±0.02 | 0.27±0.03 |
10 | 41.18±1.65 | 13.52±0.04 | 6.20±0.03 | 0.19±0.03 | 0.31±0.01 |
11 | 42.84±3.28 | 13.67±0.06 | 6.21±0.07 | 0.18±0.02 | 0.35±0.03 |
12 | 43.98±2.59 | 13.40±0.09 | 6.30±0.10 | 0.19±0.01 | 0.33±0.04 |
13 | 43.82±1.75 | 13.72±0.06 | 6.20±0.16 | 0.19±0.06 | 0.26±0.01 |
14 | 26.08±1.12 | 8.17±0.02 | 5.48±0.10 | 0.14±0.02 | 0.27±0.02 |
15 | 52.47±4.97 | 14.56±0.06 | 7.15±0.16 | 0.26±0.03 | 0.30±0.03 |
16 | 39.40±1.57 | 13.80±0.06 | 6.35±0.04 | 0.19±0.03 | 0.27±0.01 |
17 | 26.86±1.28 | 12.69±0.06 | 6.04±0.07 | 0.17±0.01 | 0.38±0.05 |
18 | 42.46±3.82 | 13.74±0.02 | 6.21±0.09 | 0.21±0.04 | 0.44±0.04 |
19 | 30.92±1.16 | 7.63±0.04 | 6.03±0.07 | 0.15±0.01 | 0.33±0.02 |
All values are mean±SD (n=3)..
Table 4 . Polynomial equations calculated by RSM program for extraction conditions of bell flower root.
Response | Second order polynomials | R2 | Significance |
---|---|---|---|
Yield | Y=−622.363750-1.869128X1+16.038736X2+12.806081X3-0.038141X12+0.031200X1X2-0.099591X22-0.069500X1X3+0.009000X2X3-1.599764X32 | 0.9664 | <0.0001 |
Total sugar contents | Y=14.127500-0.201291X1-0.000662X2-0.679527X3+0.002414X12-0.001900X1X2+0.000013514X22-0.0415005X1X3+0.040000X2X3-0.217162X32 | 0.9479 | <0.0001 |
Reducing sugar contents | Y=3.706875-0.057686X1+0.083132X2-0.152416X3+0.000670X12-0.000250X1X2-0.000530X22-0.009750X1X3+0.007750X2X3-0.031993X32 | 0.9817 | <0.0001 |
Crude saponin | Y=−0.282500-0.008291X1+0.013588X2-0.004527X3+0.000114X12+0X1X2-0.000086486X22-0.000500X1X3+0.000500X2X3-0.002162X32 | 0.9707 | <0.0001 |
Platycodin D | Y=783.512162-13.747176X1-17.156115X2+3.837466X3-0.005808X12+0.201000X1X2-0.094042X22-0.178000X1X3-0.185000X2X3+2.276047X32 | 0.7313 | 0.0759 |
Table 5 . Regression analysis for extraction conditions of bell flower root.
Response | F-Ratio | ||
---|---|---|---|
Solvent ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | |
Yield | 33.55*** | 24.60*** | 10.67*** |
Total sugar contents | 36.63*** | 1.96 | 2.62 |
Reducing sugar contents | 109.40*** | 5.36** | 6.72*** |
Crude saponin | 56.67*** | 3.95** | 13.64*** |
Platycodin D | 3.26* | 5.45** | 1.58 |
*Significant at 10% level; **significant at 5% level; ***significant at 1% level..
Table 6 . Analysis of variance for response of dependent variables.
Responses | Sources | DF1) | Sum of squares | Means squares | F-value | |
---|---|---|---|---|---|---|
Yield | Model | 9 | 997.581169 | 110.842352 | 28.73 | <0.0001 |
Linear | 3 | 821.58455 | 273.861516 | 70.98 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 170.147169 | 56.715723 | 14.7 | 0.0008 | |
Cross-product | 3 | 5.84945 | 1.94981666 | 0.51 | 0.6882 | |
Residual | 9.00 | 34.725926 | 3.858436 | - | - | |
Lack of fit | 5.00 | 29.420006 | 5.884001 | 4.44 | 0.087 | |
Pure error | 4 | 5.30592 | 1.32648 | - | - | |
Total | 18 | 1,032.31 | - | - | - | |
Total sugar contents | Model | 9 | 65.506091 | 7.27845455 | 18.2 | <0.0001 |
Linear | 3 | 63.332025 | 21.110675 | 52.8 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 1.491566 | 0.49718866 | 1.24 | 0.3502 | |
Cross-product | 3 | 0.6825 | 0.2275 | 0.57 | 0.6493 | |
Residual | 9 | 3.598572 | 0.399841 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 2.520052 | 0.50401 | 1.87 | 0.2821 | |
Pure error | 4 | 1.07852 | 0.26963 | - | - | |
Total | 18 | 69.104663 | - | - | - | |
Reducing sugar contents | Model | 9 | 2.856818 | 0.317424 | 53.55 | <0.0001 |
Linear | 3 | 2.782569 | 0.927523 | 156.47 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 0.042912 | 0.014304 | 2.41 | 0.134 | |
Cross-product | 3 | 0.031338 | 0.010446 | 1.76 | 0.2241 | |
Residual | 9 | 0.05335 | 0.005928 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 0.04623 | 0.00178 | 5.19 | 0.0678 | |
Pure error | 4 | 0.00712 | 0.005928 | - | - | |
Total | 18 | 2.910168 | - | - | - | |
Crude saponin | Model | 9 | 0.014795 | 0.00164388 | 33.08 | <0.0001 |
Linear | 3 | 0.01415 | 0.00471666 | 694.9 | <0.0001 | |
Quadratic | 3 | 0.000545 | 0.00181666 | 3.65 | 0.0569 | |
Cross-product | 3 | 0.0001 | 0.00003333 | 0.67 | 0.5911 | |
Residual | 9 | 0.000447 | 0.0000497 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 0.000367 | 0.00007345 | 3.67 | 0.1158 | |
Pure error | 4 | 0.00008 | 0.00002 | - | - | |
Total | 18 | 0.015242 | - | - | - | |
Platycodin D | Model | 9 | 699.978632 | 77.7754035 | 3.51 | 0.0377 |
Linear | 3 | 350.32115 | 116.773716 | 5.27 | 0.0226 | |
Quadratic | 3 | 134.470682 | 44.8235606 | 2.02 | 0.1813 | |
Cross-product | 3 | 215.1868 | 71.7289333 | 3.24 | 0.1747 | |
Residual | 9 | 199.421642 | 22.15796 | - | - | |
Lack of fit | 5 | 145.495762 | 2.16 | 2.16 | 0.238 | |
Pure error | 4 | 53.92588 | 13.48147 | - | - | |
Total | 18 | 899.400274 | - | - | - |
1)DF: Degree of freedom..
Table 7 . Predicted levels of optimum extraction conditions for the maximum responses of bell flower root by the ridge analysis.
Response | Predicted response | Morphology | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
Response | Solvent ratio (mL/g) | Temperature (°C) | Time (h) | Result | ||
Yield | Min Max | 25.56 10.92 | 71.99 81.96 | 2.55 3.74 | 20.25 51.58 | maximum |
Total sugar contents | Min Max | 29.71 10.69 | 77.88 82.52 | 3.23 3.53 | 7.53 15.59 | saddle point |
Reducing sugar contents | Min Max | 29.54 10.63 | 77.88 82.52 | 77.36 82.02 | 5.45 7.15 | saddle point |
Crude saponin | Min Max | 27.23 10.79 | 77.43 81.59 | 1.72 3.71 | 0.14 0.26 | saddle point |
Platycodin D | Min Max | 13.66 14.42 | 77.73 62.63 | 2.93 3.76 | 0.19 0.53 | saddle point |
Table 8 . Superimposed response surface for optimization of platycodin D and crude saponin content as a function of extraction temperature, time, and solvent ratio.
Extraction condition | Range of predicted condition |
---|---|
Solvent ratio (mL/g) | 17.5(15∼20) |
Temperature (°C) | 85(80∼90) |
Time (h) | 2.5(1.5∼3.5) |
Table 9 . Comparison between predicted and observed values of response variables within the range of the optimum condition.
Bell flower root extracts | ||||
---|---|---|---|---|
Predict value (A) | Experimental value (B) | B/A×100 (%) | ||
Yield (%) | 44.29 | 42.44±2.651) | 95.82 | 0.3501 |
Total sugar contents (mg/mL) | 12.19 | 12.68±1.89 | 104.02 | 0.6973 |
Reducing sugar contents (mg/mL) | 6.41 | 6.56±0.35 | 102.34 | 0.5352 |
Crude saponin (%) | 0.2 | 0.18±0.07 | 90 | 0.6697 |
Platycodin D (mg/mL) | 0.22 | 0.20±0.06 | 90.91 | 0.622 |
1)Values are mean±SD (n=3)..
2)Student’s one sample
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